细胞实验

切碎的组织放于含有胶原酶的完全培养基中孵育，组织分解后，通过离心去除胶原酶，高浓度接种、培养。

研磨用胶原蛋白处理的整块骨骼肌，以分散为单肌纤维。在 Matrigel 上培养单肌纤维，然后收集迁出的细胞。

切出单一器官或组织，整个置于冷的胰蛋白酶中过夜，去除胰蛋白酶，短暂孵育器官或组织，于培养基中分散细胞，稀释并接种培养物。

以肉眼和倒置显微镜观察培养物，若有指征，如PH降低，则去除旧培养基加如新鲜培养基，再重新放入温箱培养。来源：动物细胞培养：基础技术指南第五版

剪碎的组织放在胰蛋白酶中于4°C 放置16~18h ，去除胰蛋白酶后温育并于温培养基中分散细胞。

本实验来源于：动物细胞培养——基本技术指南（第五版）

用合适光学显微镜特性的培养小室培养细胞。显微镜装有气记录仪连接的摄像机，附加设备为细胞培养提供理想的温度。在记录过程中，通过控制器触发每次曝光。控制器也控制快门，以便排除对细胞不必要的照明。

本实验来源于：动物细胞培养——基本技术指南（第五版）

本实验来源于：动物细胞培养——基本技术指南（第五版）

用机械法从细胞单层分离细胞，在 27°C 条件下和悬浮状态下进行扩增培养。

将同位素标记探针与固定于显微镜载玻片上的细胞进行杂交，然后通过放射自显影将杂交位点显影。

将生物素标记或地高辛标记的探针与染色体杂交，可探测出变性染色体，并且通过双抗荧光染色可以检测出各个探针。

在悬浮或单层培养细胞体系中融合细胞，用 PEG 处理细胞的时间应很短，以减少细胞的死亡。通常，在使用选择性培养基前，需给细胞 24 h 的恢复期。

本实验来源于：动物细胞培养——基本技术指南（第五版）

连续48h 标记细胞，间隔地取样用于放射自显术。来源：动物细胞培养：基础技术指南第五版

用胰蛋白酶消化单层培养，或从悬浮培养中取样；准备一张盖玻片，将细胞加到血细胞计数板的小室内。在显微镜下计数细胞，计算细胞浓度。

细胞染色

检测细胞增殖、细胞毒性

RTCA实时检测活细胞的活性

来源：《神经生物学实用实验技术》第四军医大学出版社