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酶切实验
酶切可用于:(1)获得粘性末端进行连接;(2)验证DNA重组是否成功;(3)验证质粒酶切位点是否有效。
实验概况收录 2 操作方法 · 3 相关问答 · 3 相关文章
Southern blot 实验
Southern blot可应用于:(1)检测重组DNA;(2)分析DNA样品中是否有与探针序列同源的DNA片段;(3)验证检测片段的分子量大小。
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验证候选基因以筛查表型
考虑到筛选过程可能很复杂,并且分析产生了一个候选基因的排序列表, 有必要验证已识别的候选基因对表型的干扰。为了验证,每个针对候选基因的 sgRNA 都可以单独克隆到 sgRNA 文库的质粒主链中,并验证其筛选表型。此外,还可以量化每个 sgRNA 诱导的干扰,分別用于敲除和激活筛选的插入缺失和转录激活率,以建立表型与基因型的关系。
操作方法所属实验:全基因组CRISPR-Cas9基因敲除和转录激活筛选实验
荧光素酶互补验证蛋白互作
蛋白质-蛋白质相互作用在真核生物的各项生命活动中发挥重要作用。与其它蛋白质互作研究技术相比,借助于烟草瞬时表达系统的萤火素酶互补实验(LCA)具有简单、灵敏、可靠、高效和低背景等优点,并可轻松扩展为大规模蛋白质互作的筛选和验证研究。
操作方法所属实验:蛋白质相互作用检测
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PCR引物设计后验证的实用工具

我们在设计pcr引物的时候,经常需要将设计好的正反向引物与基因组DNA序列进行比对验证,但是因为反向引物是反向互补的,所以有些麻烦。因此,在这里介绍两个非常的小工具,一个是在线的模拟PCR,一个是本地运行的程序包,我会以附件形式上传,不需要丁当即可下载。两个都写得非常详细,相信大家都能看懂。不知道这个帖子能不能加分?希望版主看到后给予加分奖励 方法一:UCSC中的In-Silico PCR 1、登录UCSC,网址链接http://www.genome.ucsc.edu/index.html

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【求助】基因芯片验证问题

liuwenbinahslyy 基因芯片数据分析时,比值大于2.0或者小于0.5被认为是有表达差异,为什么要相差两倍呢?这个比值与PCR或Western blot验证时的基因或蛋白表达差异是否是一致的(即是否也是相差两倍以上)?按理说PCR或Western blot检测表达差异根本不需要相差两倍以上,这还取决于重复实验的次数及数据的分布情况。 zjubell liuwenbinahslyy wrote

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蛋白质纯度测定实验
任何方法都不能直接定量蛋白质样品的纯度。通常情况下,蛋白质纯度测定涉及评价特定杂质的含量或仅仅验证蛋白质样品中是否存在杂质。无论最终 g 的是为了解释分析数据、验证过程质量,还是为了确保生物药剂产品的安全性,样品纯度的测定都是至关重要的环节。本章将重点介绍蛋白质样品中蛋白质类杂质的检测方法及其可行性何局限性。
实验概况收录 1 操作方法 · 1 相关问答 · 3 相关文章
个例药物不良反应的判断
ADR的发现与判断程序应包括三个主要过程:首先对病人出现的不良情况(事件AE),医师应作出诊断,判定病人所患疾病或综合征的类型;其次是对AE进行鉴别,判定这一AE可能为药物所致,得出ADE的结论;最后作验证性检查,从而判定ADE很可能为药物所致,得出ADR的结论。
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体内分化-畸胎瘤实验验证ES细胞多能性
体内分化-畸胎瘤实验验证 ES 细胞多能性的基本过程为:1.将小鼠 ES 细胞以 10~10/ml 的细胞量离散成悬液。2.取 0.1~0.2 ml 细胞悬液注射到同源动物的皮下,即接种于同一品系、同一性别的小鼠或免疫缺陷小鼠的腹股沟、眼窝和腹腔。3.小鼠继续饲养,经过两周之后可见肿块,4~5 周之后处死,剥离肿块,固定,切片,染色,观察。
操作方法所属实验:小鼠胚胎干细胞分化潜能检测
🔥 利用免疫印迹法(WB)进行抗体纯化
利用 western blot 进行抗体纯化的步骤如下:1、上样蛋白准备。将免疫抗原作为上样蛋白进行备样,设置 3 个不同浓度的上样量(2 ug、4 ug、6 ug),以便后续可通过不同量的蛋白泳道孵育出的深浅不同验证抗体特异性。2、点样及电泳。根据免疫抗原的分子量大小配置适合的电泳胶(8%~15%),以能明确看到免疫抗原位置为准,进行电泳。120 V 恒压,90~120 min 至蓝色指示带跑到接近胶板下缘。3、转膜。先把胶用划刀裁至合适大小,再根据胶大小裁剪合适的 PVDF 膜,手不要接触
操作方法所属实验:抗体纯化实验
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使用prime 5.0验证引物的方法

相关专题 验证引物我们做实验,有时会用到别人已经用过的引物,但如何才能知道这个引物是否正确呢?我通常利用prime 5.0来验证引物。下面我用常用的内参GAPDH将验证过程介绍如下:GAPDH的引物序列来自一片外文文献:上游:AATGCATCCTGCACCACCAA下游:GTAGCCATATTCATTGTCATA所得片断为516bps。首先在pubmedline中查到GAPDH的mRNA序列,如图然后打开primer 5.0,点file→new→DNA sequence,将上面

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标准菌株验证鉴定步骤

菌种活化:干粉标准菌株 标准贮备菌株 工作菌株;   1.1    金黄色葡萄球菌、大肠埃希氏菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌标准菌株: 挑取部分干粉溶解于0.9% 无菌氯化钠溶液中,划线接种于营养琼脂平板上,36℃±1℃ 培养18-24 小时。并观察菌落形态。 a. 金黄色葡萄球菌:菌落凸起,圆形,不透明; b. 大肠埃希氏菌:菌落稍凸,圆形,湿润,乳白色; c. 铜绿假单胞菌:菌落扁平,圆形,边缘不整齐,光滑湿润,可产生蓝绿或黄绿色素; d. 枯草芽孢杆菌: 表面粗糙不透明

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多克隆抗体提取实验
由多种抗原决定簇刺激机体,相应地就产生各种各样的单克隆抗体,这些单克隆抗体混杂在一起就是多克隆抗体。主要用于(1)批量提取多个抗体(2)为进一步验证抗体的作用进行基础操作。
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MSCs 培养物的扩增和冻存实验
缩小细胞培养体积试验证明,MSCs最好培养于直径15cm的Nunclon或Corning板中,面积在140cm2和150cm2之间。细胞产率取决于培养皿的数量,一般使用此方法传代,每个培养皿中可收获5X105个细胞。来源:《人干细胞培养》
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蛋白质组数据的多元分析
为 0 时表示蛋白质点不存在。这个二元列表在某些情况下非常有用 ( 见注释 4) 。另一个非常重要的一点就是要同时对这些蛋白质点进行标记(见注释 5) ,否则数据录入到 Excel 中,将会产生这样或那样的问题(见注释 6)。3.5 将表格数据输入到多元分析软件进行分析1. 验证方法接下来是验证方法的选择,选择的依据主要是样品的数量和建立另一套数据的可能性 。如果这套数据包括很多凝胶,首选的验证方法是测试集(test set) 法,其次是交叉验证(cross- validation) 方法
操作方法所属实验:蛋白质组数据的多元分析实验
🔥 分子克隆实操技术
5 min 收菌,留约 100 μL 上清轻轻吹打混匀,均匀涂布接种于含抗生素的固体 LB 平板中,倒置于 37 ℃ 培养箱中培养 12~16 h 左右。4、筛选阳性克隆。挑取单个菌落于 1.5 mL EP 管中,振荡培养 1~2 h 后取 1 μL作为模板,进行菌液 PCR 验证,观察是否出现目的条带。5、试管扩大培养。将上述验证正确的菌液,加入 5~20 mL 含抗生素的 LB 肉汤培养基,37 ℃ 摇床培养过夜(12~16 h),按照质粒抽提试剂盒进行提取,可以再次酶切或者测序验证
操作方法所属实验:🔥 分子克隆技术
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