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DNA片断的酶切实验
1.  样品加入次序为水、缓冲液、DNA最后为酶,不应颠倒。2.  加酶步骤要在冰浴中进行,在加酶前应先将水、缓冲液及待切DNA混匀。3.  反应体积中水的量要尽量少,即反应体系的体积要尽量少,一般水解0.2~1 ug 模板DNA时,应将体积控制在20~30 ul 内。但要保证所加酶的体积不高于总体积的1/10,因为限制性内切酶是保存于50%甘油中的,如加酶体积高于总体积的1/10,则反应液中甘油浓度将大于5%,而此浓度将抑制内切酶活性。4.  为了控制反应体积和促进反应进行,要求模板DNA
操作方法所属实验:DNA 片断的酶切实验
利用PCR引物点突变
1.  制备模板(见基本方案,步骤1和2) 2.  合成和纯化寡核苷酸引物并对5‘端磷酸化。 3.  扩增模板DNA(基本方案,步骤4和5),在最后一次延伸结束后,加5 U 的klenow酶,30℃保温15 min。4.  分析并处理反应产物(基本方案1,步骤6和7)。5.  取所得扩增片段的一半量用侧翼序列内的限制性内切酶切割,低熔点琼脂糖凝胶电泳 纯化酶切片段。 6.  将两个扩增的片段通过平末端连接亚克隆入合适的载体。7.  按基本方案1,步骤10、11进行。 
操作方法所属实验:定点诱变实验
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Northern杂交实验指导之四:模板DNA制备

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基本方案
1.  制备模板DNA,如DNA不是经氯化铯梯度纯化的,100℃煮沸10 min 以灭活核酸酶。 2.  制备寡核苷酸引物,若PCR产物要进行平端克隆,就应该对引物的5'端羟基进行磷酸化处理。 图一、用PCR反应引入单一的酶切微点和产生符合读码框架的融合蛋白。 3.  建立标准的扩增反应,以矿物油覆盖表面,在以下条件下进行20~25轮扩增循环:94℃变性1 min,50℃退火1 min,72℃延伸3 min,最后一个循环在72℃延伸10 min 尽可能使扩增产物完整。 图二、序贯PCR法构建
操作方法所属实验:聚合酶链反应构建重组 DNA
双重PCR毛细管电泳法
1.总DNA提取用CTAB法提取植物总DNA.2.PCR体系及反应条件双重PCR反应体系:1×buffer,2.5mmol/L MgC12,0.25mmol/L dNTP,primers(0.4 μmol/L ZY1-35S,ZY2-EPSPS和0.4 μmol/L ZY3-NOS,ZY4-NOS),1.5units of Taq DNA Polymerase(MBI),模板DNA100——200ng,总反应体积25μ1.PCR循环参数:95℃预变性3min;95℃ 45s,55℃ 60
操作方法所属实验:双重 PCR- 毛细管电泳法检测大豆转基因
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Northern杂交试验指导手册-模板DNA的制备

A.质粒DNA的小量提取 试剂及其配制 含AP的LB液体培养基 TE缓冲液:10mmol/L Tris-HCl (pH 8.0) 1mmol/L EDTA (pH 8.0) 溶液I: 25mmol/L Tris-Cl (pH 8.0) 10mmol/L EDTA 50mmol/L 葡萄糖 高压灭菌15min.后,4℃贮存。 溶液II: 0.2mol/L NaOH 1% SDS(临用前现配制) 溶液III(100ml):5mol/L

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Northern杂交试验指导手册-模板DNA的制备

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PCR技术原理、实验步骤和应用
重组与表达、基因结构分析和功能检测中具有重要的应用价值。PCR可以被认为是与发生在细胞内的DNA复制过程相似的技术,其结果都是以原来的DNA为模板产生新的互补DNA片段。细胞中DNA的复制是一个非常复杂的过程。参与复制的有多种因素。PCR是在试管中进行的DNA复制反应,基本原理与细胞内DNA复制相似,但反应体系相对较简单。PCR由变性--退火--延伸三个基本反应步骤构成:①模板DNA的变性:模板DNA经加热至94℃左右一定时间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使之成为单链
操作方法所属实验:PCR 技术
随即寡核苷酸引物合成法
1.  在1. 5 ml 离心管中加入500 ng~2 μg 模板DNA,加水至总体积为34 μl。 2.  在沸水中变性DNA 5 min 置于冰浴5 min,稍加旋离。3.  按顺序加入下列溶液:(1)10 μl  生物素酰化随即多聚体(2)5 μl  dNTP/生物素混合物(3)1 μl  klenow酶(5U)(4)37℃温育1 h。 4.  加入3 μl 0.5 mol/l EDTA pH8.0以终止反应。加入5 μl 4 mol/l LiCl和150 μl 冰冷的无水乙醇,置于冰浴
操作方法所属实验:生物素酰化探针的制备实验
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骨、牙组织模板DNA提取――Glass milk改良法

1 主要配制试剂 1)0.5M Na2EDTA PH8.02) Proeinase K(20 μg/μl)3)6M GuSCN 10mlGuSCN 7.2g加D·W至10ml水浴60℃~65℃溶解4) 二氧化硅悬浮液(Silica susponsion、用前混匀) Silica 12g加D、W至100l ↓ 充分混匀置于100ml量筒内室温沉降24小时 ↓ 取上层溶液85ml加D、W至100ml,置于100ml量筒内充分混匀室沉降5小时

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骨、牙组织模板DNA提取实验方法优化

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DNA定点突变实验
一、引物设计每条引物都要携带有所需的突变位点,引物一般长25~45 bp,设计的突变位点需位于引物中部。 二、反应1.  使用高保真的pyrobest DNA聚合酶,循环次数少,一般为12个循环。 2.  反应体系: (1)10x pyrobest Buffer: 5 ul (2)dNTP Mixture(10 mM) :1 ul (3)模板DNA(5~50 ng) :1ul (4)primer 1 (125 ng) :1 ul (5)primer 2 (125 ng) :1 ul 
操作方法所属实验:DNA 定点突变实验
RAPD分析技术
一、 试验条件 1.  药品试剂 (1)模板DNA(10~100 ng) (2)寡核苷酸引物(20 mmol/L贮存液,可向Operon Technologies或Perkin Elmer公司购买,也可以自己合成) (3)0.2 mmol/L dNTPs(必须使用高质量的dNTPs,这一点非常重要。dNTPs经反复化冻后会发生降解,因此应分成小份保存。应注意混合物中四种dNTP的量要相等) (4)Taq DNA聚合酶(Perkin Elmer,Norwalk,Connecticut) 
操作方法所属实验:RAPD(随机扩增多态性DNA)分析技术
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