dxy_9d3ayzq8
我做的是外周血的T淋巴细胞分型,主要是检测th1/th2/th17等亚型。需要裂红后固定染色。
我用的是400ul的血,加入刺激剂后,培养箱刺激5小时,拿出来加入4ml 1×红裂液,冰上裂解15min,然后450g离心10min。正常离心完我应该能看到管底白色的白细胞沉淀,但是却看不着,这是为什么?我之前试过先裂红,再刺激,裂红的时候的确能看到下面的白色沉淀,但是裂红后,刺激5小时之后,在用fbs洗的时候,白色沉淀变成白色的膜一样的东西,用枪头吹打不开。这又是为啥?
问题:全血和红细胞裂解液的比例到底怎么配呀,裂红在一个什么条件下合适呢?裂红后离心条件呢?
Eason老歌迷
第一个问题:红细胞裂解液(Tris-NH4Cl)的配制比例和方法:称取3.735g氯化铵、三羟甲基氨基甲烷(Tris)1.3g加水溶解并稀释至500ml。0.22μm滤膜过滤除菌,4℃保存。细胞悬液加红细胞裂解液后,混匀静止4-5分钟,待红细胞完全破碎,1000r/min离心5分钟,弃上清去除红细胞,得到白细胞沉淀。
第二个问题:我觉得你的离心力不够,或者是你提的细胞量太少了。