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胞内磷酸化蛋白、细胞因子标记和表面标志的结合分析

相关实验:激酶信号级联放大的流式细胞分析实验

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简介

胞内磷酸化蛋白、细胞因子标记和表面标志的结合分析最适于新鲜分离 PBMCs 的分析。用 Ficoll-Paque 密度离心分离 PBMCs,PBMCs 直接应经于分析或经细胞分选(磁分选或 FACS 分选)富集其中的某一特定群体后,将细胞进 行刺激, 并进行标记。

材料与仪器

器材: 96 孔 U 底培养板、离心机等。

试剂:

①1 x PBS(磷酸缓冲液):称取 1.44 g Na2 HPO4,0. 24 g KH2PO4,8 g NaCl 和 0. 2 g KC1 溶 于 850 ml 双蒸水。用 HC1 校其 pH 至 7.4, 并补足其体积至 1 L, 常温保存。

②胎牛血清(标准细胞培养用血清),4℃ 保存。

③甲醛:4%〜36% 多聚甲醛自制或购买(我们用 16% 多聚甲醛,Electron Microscopy Sciences 公司产品,cat. no. 15710, Washington,PA)。常温保存。

④染色液:1 xPBS,4% FCS, 和 ImM 叠氮纳。4℃ 保存。

⑤EDTA:制备 5M 储存液,制备 PBS-EDTA 缓冲液应用。EDTA 被用来避免在流式细胞 仪获样过程中形成细胞团。常温保存。

⑥PBS-EDTA:PBS 和 1 mM EDTA。 常温保存。

⑦皂素:称取 10 g 皂素(皂素含量≥25%, Sigma, St. Louis, M0)溶于 100 ml PBS, 制备 10% 皂素储存液。37℃ 轻轻搅拌, 直至皂素全部溶解。无菌滤膜过滤(0.22μm),4℃ 保存。

⑧磷酸洗涤缓冲液:PBS,lmM 磷酸甘油酯,1 mM 原飢酸钠,1 μg/mL 微囊藻素(500 μg 小玻璃瓶可从 Calbiochem 购买,现在的 EMD Biosciences, Inc. ,San Diego, C A),1 mM 叠氮化物。 这是所有后面用到的缓冲液的基础缓冲液。4℃ 保存。

⑨皂素通透缓冲液: 磷酸洗涤缓冲液,0.2% 皂素,4% FCS,lmM 叠氮化物。4℃ 保存。 最后通透时皂素的终浓度每样本不能高于 0.1%。用 0.2% 的浓度来补偿洗涤后孔中残留的液体。4℃ 保存。

⑩皂素染色缓冲液:同皂素通透缓冲液

⑪胞外染色缓冲液:磷酸洗涤缓冲液,4% FCS, 和蛋白酶抑制剂混合片剂 (Boehringer Mannheim, 现在的 Roche Applied Science, Indianapolis, IN)。4℃ 保存。

⑫固定缓冲液: 用磷酸洗涤缓冲液制备 1% 多聚甲醛。4℃ 保存。

⑬通透缓冲液: 磷酸洗涤缓冲液,0.2% 皂素和 4% FCS。这也用于制备胞内染色混合液。4℃ 保存。

步骤

胞内磷酸化蛋白、细胞因子标记和表面标志的结合分析的基本过程可分为如下几步:

(一)细胞准备

A 按(0.5〜1)×106/100μL 培养基/每孔, 将 PBMCs(或纯化细胞)铺至 96 孔 U 底培养板中。

B 用设定的刺激剂在 37℃ 条件下刺激所需要的时间。

C 设相应对照:①对所有颜色设单色对照(阳性和阴性);②磷酸化蛋白对照(如刺激 与不刺激组);③对自发荧光所设的不标记对照,和④针对背景染色的胞内同型对照。

D 加入 100μL 磷酸缓冲液收获细胞,离心(500 g,4℃,5 min), 轻轻拍打培养板, 立即用 冰冷的胞外标记缓冲液 [(1〜2)×106。细胞用 50μL] 重悬细胞, 并置于 4℃。

(二)细胞表面分子标记

A 将样本与细胞表面标记混合液(50μL 胞外标记缓冲液)避光冰上孵育 15 min。

B 加入 150μL 磷酸洗涤缓冲液并离心(500 g, 4℃)。用 200μL 磷酸洗涤缓冲液洗 1 次, 压紧细胞。

(三)固定与通透

A 避光, 冰浴条件下用 100μL 固定缓冲液固定细胞 30 min。如用储存液,最终浓度应 在 1%〜2%。

B 加入 100μL 磷酸洗涤缓冲液, 并压紧细胞。用 200μL 磷酸洗涤缓冲液洗 1 次,压紧 细胞。

C 用 200μL 通透缓冲液通透,上下吹打 4〜5 次。避光,4℃ 条件下孵育 15 min。

D 加入 100μL 磷酸洗涤缓冲液,离心细胞, 并轻轻拍打培养板。

(四)胞内染色

A 在避光、冰浴条件下,用 50μL 胞内标记混合液(用通透缓冲液制备)重悬细胞至少 30 min(通常足够)。在室温条件下孵育更长时间(lh)能增加某些标记抗体的标记效果。加入 150μL 通透缓冲液并离心。

B 用 200 心通透缓冲液洗 1 或 2 次(2 次洗涤通常足够,但更多次洗涤可降低背景)。

C 用 PBS-EDTA(100 〜200μL)重悬,并转移至 FACS 管。

D 流式细胞仪分析。

来源:丁香实验

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