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简介
本实验来源「细胞实验指南」 黄培堂 等译。
来源:丁香实验
操作方法
1. 将 5X105 细胞移入无菌的 1.5 ml Eppendorf 管中,4℃ 2000 r/min 离心 5 分钟,弃上清。 2. 加入 20 μl 溶解缓冲液。用移液管尖头混匀细胞沉淀。 3. 加 10 μl RNA 酶A/T1 混合液,轻弹管尖混匀,不要形成旋涡。37℃ 孵育 30~120 分钟。 4. 加 10 μl 蛋白酶 K,轻弹管尖混匀,50℃ 孵育至少 90 min,也可
个体核的PI荧光1. 在 96 孔圆底组织培养板中加入 100 μl 悬浮细胞,200 g 离心 5 分钟。 2. 吸出上清,用 250 μl 低渗荧光染料溶液溶解沉淀细胞,用移液管辅助混匀细胞。 3. 样品移至 FACS 微管,旋转搅拌,冰上避光孵育至少 30 分钟,用流式细胞计量仪读取 PI 荧光。测得凋亡细胞核百分率结果。
乙醇固定后PI染色1. 在 5 mmol/L EDTA-PBS 中洗 1X106 细胞,重悬于 300 μl 洗涤缓冲液中。加 700 μl 100% 的冰冷乙醇,滴加,并轻微搅拌。旋转搅拌混匀。 2. 14000 g 短时离心沉淀细胞。吸出上清,在 500 μl 洗涤缓冲液中重悬细胞。加 50 μl RNA 酶在室温下孵育 30 分钟酶切 RNA。 3. 加入 500 μl PI 溶液,旋转搅拌,按上述方法进
JAM分析1. 实验前一天,将细胞接种于新鲜培养基。对数生长期细胞可更好地渗入 [3H]-胸腺嘧啶脱氧核苷。 2. 收获细胞,在新鲜培养基中以 1X106 细胞/ml 重悬,用 5 μCi/ml [3H]-胸腺嘧啶脱氧核苷标记 2~4 小时。或者,用 1 μCi/ml [3H]-胸腺嘧啶脱氧核苷过夜标记较低密度的细胞。 3. 用 HBSS,PBS 或培养基将细胞洗 2 次,在培养基中重悬 0.2X106
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