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小鼠给药造模

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人胰腺癌裸小鼠模型
将人胰腺癌细胞株8988 接种于裸鼠腋窝处皮下,每周测量肿瘤大小,第42d 处死小鼠。肿瘤组织及相关脏器送病理及电镜检查,放射免疫法检测相关抗原。皮下肿瘤组织细胞及细胞株培养,HE染色。
酶诱导法构建肺气肿动物模型(肺气肿动物模型建模实验)
猪胰蛋白酶和木瓜蛋白酶是针对弹性纤维的蛋白水解酶,通过气管内滴入直接破坏肺泡间隔的弹性纤维,使肺泡腔持续扩张而形成肺气肿。现广泛用于各种动物肺气肿模型的复制,也是目前最常用的肺气肿动物模型。 但木瓜蛋白酶不是特异性作用于肺泡间隔的弹性纤维,还会同时造成气管壁和血管壁等组织的破坏,现主要用于蛋白酶用量较大的大动物如犬、马及绵羊等肺气肿模型的诱发,而且通常采用雾化吸入的方法使木瓜蛋白酶尽可能进入肺泡,
瘤细胞皮下移植侵袭模型构建
往先天性免疫缺陷的裸鼠皮下注射一定量的肿瘤细胞形成肿瘤,从而观察肿瘤的发生发展情况以及药物干扰情况等等。
诱发性肿瘤动物模型
诱发性肿瘤动物模型是指研究者用化学致癌剂、放射线、致癌病毒诱发动物的肿瘤等。
甲氨蝶呤免疫抑制小鼠鲍曼不动杆菌感染肺炎动物模型
微创微量气管直接注射法建立的感染模型以小鼠死亡为主, 肺部感染模型成功率高。超声雾化法建立的感染模型可以模拟临床感染性肺炎的整个过程, 相似性。 重复性、可靠性, 适用性和可控性均较高, 且操作简单, 可以同时大批量操作, 实用性强。
CBA/J 与 DBA/2 小鼠自然流产模型
CBA/J与 DBA/2 免疫性流产小鼠模型是 CBA/ 和 DBA/2 是两种较常用的小鼠近交品系,与 DBA/2 交配的 CBA/雌性小鼠(CBA/ x DBA/2)具有反复自然流产的特点。
粒单核细胞白血病(WEHI-3)小鼠模型
粒单核细胞白血病(WEHI-3)小鼠模型,是用小鼠构造的急性非淋巴细胞白血病模型。
卵白蛋白诱发法构建支气管哮喘动物模型(支气管哮喘动物模型建模实验)
卵白蛋白激发豚鼠哮喘发作是目前国内外常用的方法,其方法简单,可复制性强,且豚鼠是最好的显示气道高反应型的特征动物,其哮喘发作与人的表现相似。
🔥 小鼠黑色素瘤皮下荷瘤模型
B16F10 黑色素瘤皮下荷瘤模型操作简单,成本较低,可重复性强,实验周期相对较短,是研究黑色素瘤常用的动物模型。
氯化铵中毒法构建肺水肿动物模型(肺水肿动物模型建模实验)
氯化铵中毒法构建肺水肿动物模型是在腹腔注射氯化铵后数分钟即可诱发肺水肿,动物呼吸频率加快,可闻及湿啰音,肺重系数升高。此方法简单、经济易行,且重复性好,成功率高。
L-精氨酸腹腔注射法制备胰腺炎模型
L-精氨酸腹腔注射法制备大鼠急性胰腺炎模型操作简单、价廉,对机体损伤少,避免了手术引起的对内环境的破坏,感染机会增加,动物易于死于非实验因素等不良因素,而且对急性胰腺炎的诱导呈现良好的剂量和时间依赖性,为研究不同时期急性胰腺炎的变化提供了良好的途径,是目前一种较理想的实验模型。
小鼠感染模型-肠出血性大肠埃希菌动物模型
小鼠感染模型是通过口服途径感染细菌,并将 EHEC 在肠道定植后、释放毒素并引起小鼠病理改变和死亡。
铅中毒小鼠模型的建立
铅中毒小鼠模型,是通过人为方法导致动物体内血铅升高,从而引发铅中毒。
尾静脉注射法制备肺结核动物模型
结核分枝杆菌在体内感染后通常会引起机体组织的渗出、坏死或增生 3 种病理变化,并根据机体的反应性(包括免疫反应和变态反应)、菌量、毒力及组织特性的不同,可出现不同类型的病理变化。
孕激素联合绒促性素造模法
孕激素联合绒促性素造模法是持续补充外源性孕激素(progesterone,P)可抑制 E、P、FSH、LH 的分泌,导致不排卵;在卵泡早期联合使用人绒毛膜促性腺激素(human chorionie gonadotropin, hCG)可致卵泡闭锁。
【动物给药】小鼠关节腔内注射
(1)将注射器套上针头并将针头拧紧,抽取实验所需给药量,排尽注射器内空气。(2)将小鼠麻醉后仰卧固定,左手弯曲小鼠一侧后肢膝关节,充分暴露髌骨关节面。(3)将注射器针头在末端 2 mm 处折叠 9°,以控制进针深度。沿膝关节弯曲的角平分线方向进针,将髌骨悬韧带拨向外侧,注入药液。
【动物给药】小鼠静脉注射
1)将注射器套上针头并将针头拧紧,抽取实验所需给药量,排尽注射器内空气。2)将小鼠放入固定器内,鼠尾拉出,朝向操作人员。3)一只手捏住鼠尾,另一只手用医用酒精棉消毒,同时反复摩擦使静脉扩张。4)在距鼠尾尖 1/4 至 1/3 处血管,持注射器向尾根部呈 30° 进针。 5)将针头刺入确认有回血后,将溶液按实验要求速度注入。注射后立即拔针,用纱布或干棉球轻压注射部位止血。6)注意事项:刺入的深度大约
【动物给药】小鼠腹腔注射
(1)将注射器套上针头并将针头拧紧,抽取所需给药量,排尽注射器内空气。(2)给药部位为腹部两侧下 1/3 至 2/3 处,避开腹中线,向左或向右 0.5 cm。(3)一只手抓住小鼠尾稍向后拉,另一只手的拇指和食指、中指抓住颈部到背部的皮肤,将皮肤拉紧使头部不能活动,头部向下倾斜固定小鼠,避免入针时刺伤其内脏,用无名指和小指固定鼠尾,腹部皮肤绷紧更容易入针。(4)一只手固定好小鼠后,另一只手用镶子夹
【动物给药】小鼠肌内注射
1) 将注射器套上针头并将针头拧紧,抽取实验所需给药量,排尽注射器内空气。2) 给药部位一般选择股二头肌,药量多需多点注射时可选用股直肌。3) 由助手用一只手从背部轻轻抓住小鼠,另一只手捏住给药侧后肢的上方。4)操作人员用一只手拉住被注射后肢,用镶子夹住医用酒精棉球消毒注射部位,另一只手持注射器,针头呈 45 。倾斜刺入肌肉约 0.5 cm。刺入后无回血现象即可推注药液。注射完毕拔出针头,有出血或
【动物给药】小鼠皮内注射
1) 操作前需先对给药部位的皮肤进行脱毛处理。一般选取脊柱两侧的躯干中间部分皮肤。脱毛时,可先将给药部位的毛发剃短,再使用脱毛药剂。用止血钳夹住刀片将脱毛药剂及毛发刮掉,用干棉球蘸清水擦拭。2) 操作人员用一只手将给药部位皮肤绷紧固定,另一只手持注射器,让注射针头的横断面朝上,将针头与皮肤呈约 10。沿表浅层刺入皮肤内,进针要浅,避免进入皮下。3)松开固定皮肤后,慢慢注入一定量药液,注入时会感到有
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