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瘤细胞皮下移植侵袭模型构建

相关实验:皮下移植瘤模型构建

别名:裸鼠皮下移植瘤动物模型,皮下移植瘤动物模型,裸鼠皮下成瘤实验

最新修订时间:

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合作专家 | 肖婷婷硕士

生物化学分子生物 汕头大学

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审核专家 | 于涛博士

生物化学分子生物 中国科学院大学

简介

往先天性免疫缺陷的裸鼠皮下注射一定量的肿瘤细胞形成肿瘤,从而观察肿瘤的发生发展情况以及药物干扰情况等等。

用途

常用于研究肿瘤细胞的成瘤能力、肿瘤细胞的转移、肿瘤细胞的耐药和靶分子对肿瘤细胞的发生发展的影响等等。

材料与仪器

1、动物选购:一般选择 6 周龄左右,体重为 18~22 g 的裸鼠,检疫通过后,饲养于隔离屏障环境。

2、肿瘤细胞准备:注意计算好细胞用量,细胞量一般为 5 × 106 个/200 μl(不同细胞系的接种量可能不同)。

3、耗材准备:PBS×1、75% 酒精×1、滤纸×3 张、手套、器械盒(主要有弯剪、镊子、1 ml 注射器和止血夹)、棉球等。

步骤

1、肿瘤细胞扩增:

(a)取肿瘤细胞复苏并扩增,用 0.25% 胰酶消化,1 000 rpm 离心。

(b)去除上清,加入 1×PBS 将细胞洗一遍,再加入 1×PBS 重悬,计数,按比例稀释细胞悬液,调整为约 5 × 106 个/200 μl 的细胞悬液。

(c)用无血清的培养基吹匀离心两遍,再用无血清的培基重悬混匀,置于 0.5 ml 的 EP 管中,冰上备用(考虑到细胞活性,应尽快注射到裸鼠皮下)。

2、成瘤过程:

(a)根据实验要求分组,每组小鼠至少 5 只以上。

(b)抓取时用大拇指和食指抓住裸鼠的整个背部和头部,无名指和小指压住小腿和尾巴。棉球蘸取酒精后擦拭注射部位(背部或腋下)。用 1 ml 注射器(选择常规 1 ml 注射器即可)吸取 200 μl 细胞悬液,注射至裸鼠表皮下。

3、成瘤后:

(a)注射瘤细胞后通常在 3 天后肉眼观察,并在每次观察时都记录裸鼠的体重。

(b)成瘤之后需要定时用标尺记录肿瘤的长轴和短轴变化,并记录统计。

(c)根据实验要求,达到时间后颈椎脱臼处死裸鼠,取出肿瘤,拍照记录。拍照时注意光线,对焦清楚。

(d)计算肿瘤体积公式为:长轴×宽轴 2/2。

注意事项

(a)细胞在大量扩增时为了保证细胞的活性,可以适当增加血清和抗生素浓度。

(b)皮下注射成功的标准:皮下注射形成可以推动的明显突起(参考水痘)。

(c)皮下注射瘤细胞悬液后停留几秒再拔出针头,以防止悬液随针头渗漏。

(d)注射成瘤后的小鼠容易死亡,注意实验周期。

(e)可以先进行各 3 只分组的预实验,如果在裸鼠中实在无法成瘤,可以选择其他免疫缺陷型,如 NOG、SCID 等小鼠。

(f)裸鼠成瘤由于存在个体差异,可能无法成瘤,所以在分组时尽量多,或成瘤后再进行随机分组。

(g)提高细胞的浓度能够提高成瘤速度,但这个范围并不固定,难以把握。

来源:丁香实验

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