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Raw264.7 巨噬细胞培养和传代

相关实验:细胞传代实验

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竹梅九州

因实验所需

需要培养M0 RAW264.7细胞,一般而言该M0,显微镜下细胞光亮圆形,尽量不需要M1和M2,即极化的细胞,显微镜下能够清楚看到细胞为长梭型。


培养3代之后,长梭型细胞占比更多,怎么才能减少极化现象?


传代时用吹打手法,没有用胰酶。


希望各位同行共同讨论,这细胞很难养。

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7 个回答

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龙大人驾到

有帮助

减少极化现象可以从以下方面考虑:

 

1. 传代时尽量避免过度吹打,以避免造成机械应力引起的异常活化和极化。

 

2. 将培养基中的M-CSF浓度控制在适宜范围内,不过度刺激细胞。同时,在培养基中加入一些抗极化因子,如IL-4、IL-10等,有助于减少极化现象。

 

3. 使用适宜的细胞培养条件,如适宜的pH值、温度、氧气浓度等,保证细胞在较为稳定的状态下生长。

 

4. 在培养过程中尽量保证培养器内的通气性和清洁度,避免细菌、真菌污染等因素对细胞生长的影响。

 

需要注意的是,RAW264.7细胞具有一定的极化倾向,但并不完全是M1或M2型细胞。因此,在培养过程中需注意区分M0、M1和M2等不同类型的巨噬细胞,并且根据实验需求进行相应的操作。

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来一起探讨

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在培养时候,要注意培养时用的血清及培养基的选择,细胞密度在70%左右就可以传代,传代过程中,吹打时注意用枪时的力度及速度,保证吹打均匀,离心时,注意转速在800-1200rpm。

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dxy_u0rxub1r

有帮助

增加传代密度,缩短生长时间,一般我们长一天就能用(传代细胞数大概是1.5×10^6~2×10^6个,就一个T25瓶长满后1:3或1:4传代),不想铺板,就传稀疏点,两天传一次。

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竹梅九州user-title

你们细胞生长状态比较好,一天就能传代了,我也是t25细胞瓶,一般是瓶子长60-70%,1:4-1:5。

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z流沙z

有帮助

培养这个细胞,最需要注意的是两点,一个是细胞密度,它生长速度快,尤其是在酸性环境中,而且容易抱团,因此要保证足够的培养基,传代的时候建议离心。另外一个是传代不建议用胰酶消化,也不建议强烈吹打,推荐用细胞刮刀,轻柔倾斜着刮下来,养过一段时间都没问题

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sswei

有帮助

在接种细胞时保持一个适中的传代密度,避免其向终末细胞分化,要关注好细胞的汇合程度,控制好细胞的生长速度,不能等到叠加成层时才去传代。RAW264.7细胞传代后贴壁时间较短,半小时左右绝大部分细胞就能够贴下去,刚贴壁时细胞呈圆形,折光度很好,镜下观察如小珍珠状一个个地散落于培养皿中。生长一段时间后,部分细胞会变成类似四角形,伸出伪足之类的。这个时候就是在提醒你注意传代了,此时无论汇合度如何都需要进行传代了。改善细胞培养环境,例如与细胞接触的器皿保证无菌,使用质量较高的胎牛血清。

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毛利小五郎的徒弟

有帮助

多次吹打,用pbs清洗,给细胞一定时间适应之后再进行传代

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loveliufudan

有帮助

在培养MO RAW264.7细胞时,如果想减少极化现象,可以尝试以下几个方法:

优化培养基成分。选择适当的培养基成分,可以减少细胞极化的发生。可以根据细胞类型和实验要求调整培养基中营养物质、生长因子和激素等成分的浓度和种类。

控制细胞密度。细胞密度过高或过低都可能导致细胞极化。因此,在传代时要注意控制细胞密度,不要让细胞过于稀疏或过于紧密。

增加细胞接触面积。细胞极化的发生与细胞接触面积有关。因此,可以使用适当的培养皿和培养条件,增加细胞的接触面积,如使用培养皿底面积更大的瓶子、使用旋转培养器等。

不要使用过多的细胞子域。细胞子域可以激活特定的信号通路并促进细胞极化,因此可以尝试减少或避免使用过多的细胞子域。

此外,使用吹打手法传代而不使用胰酶也可以减少细胞极化的发生,因为胰酶消化会使细胞受到损伤,促进极化。但需要注意,吹打手法需要注意操作方法和力度,避免对细胞造成损伤。

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