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有小鼠肝kuffer细胞分离的详细步骤么?之前按照一篇硕士毕业论文的操作,一只老鼠只能分300w左右

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4 个回答

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dxy_y6ygzew3

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请问博主 优化后的具体步骤油吗?能取到多少细胞呢?

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bamboopiggy

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1.将肝脏摘下,置入预热37°C0.5 g/L 胶原酶IV的孵育液50 mL中,剔除肝包膜和结缔组织,使细胞散落.孵育时间20 min,其间水浴振荡200 r/min.孵育液用200目的不锈钢筛网滤过,得到肝组织细胞悬液.

2.将上述肝组织细胞悬液以500 r/min离心10 min,获得细胞团块.加入PBS50 mL,充分吹打悬浮后,再以50 r/min离心2 min,保留上清液.此时的沉淀为肝实质细胞团块,而上清液即为非实质肝细胞悬液(NPC).

3.将得到的NPC500 r/min离心5 min,获得沉淀,再经PBS液洗涤2次,最终悬浮于DMEM40 mL.

4.10 mL的离心管若干支,仔细将Percoll分离液铺层:底层为70%Percoll 2 mL,密度是1096.8 g/L;中层为30% Percoll 2 mL,密度是1044.8 g/L;顶层为NPC细胞悬液2 mL.铺层时尽量减少振荡,保持每层之间界面清晰.放入高速冷冻离心机,离心(4°C800 r/min20 min).

5.取出离心管后,可见30%70% 界面之间有一白膜状的细胞层面,此层即为富含Kupffer细胞的NPC细胞,用尖吸管轻轻将此层细胞吸入,移入另一试管中,加入PBS液,以500 r/min离心5 min,反复2.最终细胞悬浮于4 mL DMEM液中.

6.取部分用于计数和鉴定.用苔盼蓝染色检测细胞活性,并计数细胞量.将获得的细胞以1×108/L的密度接种于3.5 mm的培养皿中,每个培养皿预先放置含小牛血清的DMEM1.5 mL.置入37°C50 mL/L CO2950 mL/L O2950 mL/L 湿度的CO2的培养箱内.

7.培养60 min后取出,洗去非贴壁细胞,获得纯化的Kupffer细胞.

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Eason老歌迷

有帮助

具体步骤你可以去查文献,或者什么的。我可以给你说个大概。1小鼠肝脏 Kupffer细胞分离和纯化;2消化一小时,摇匀一次,移液枪轻轻吹打,待组织块消化完全,细胞基本散落形成细胞悬液后,滤去未消化的组织块和结缔组织。

用15ml离心管收集细胞悬液,离心两次,取上清,可以去除大部分的小盘肝脏细胞。然后,1500转,5min,弃上清,收集沉淀,用含有10%胎牛血清(FBS)的RPMI-1640培养基悬浮细胞沉淀。然后不连续密度梯度离心,2000gx20min 4℃。离心后取第三层,收集后 PBS 漂洗两次以去除Percoll液。将盛有漂洗过的细胞沉淀的离心管插入到冰中40min。调整细胞浓度为1x106个/ml,接种到24孔板(每孔1ml培养液)。10%RPMI1640混悬细胞后铺板贴壁,30min 37C。PBS 洗两次去除非贴壁细胞后,所得细胞即为小鼠肝脏Kupffer细胞。

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未来9

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可以参照一下这篇文章:

https://wenku.baidu.com/view/94c25dbbbb4cf7ec4bfed074.html

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