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(1)稀释标本:这在判断急性病原体感染的特异IgM抗体如抗HAVIgM,抗HBclgM, TORCH的IgM抗体检验等尤为有用。因为急性感染时,血循环中特异的IgM抗体滴度通常很高,而RF滴度通常相对要低得多。因此,在测定前对标本进行稀释,特异的IgM因高滴度存在仍可检出,而非特异的RF则会因为稀释变成非常低的滴度,从而对测定几乎不产生干扰。现在,有些特异IgM检测Elisa试剂盒不要求稀释标本,直接检测,这样虽然方便了实验室技术人员的操作,但容易出现假阳性结果,并且由于某些慢性感染,如HBV的感染,血循环中抗HBelgM可持续以一定的滴度存在,标本不做稀释即进行检测,即可出现阳性结果,从而失去抗HBclgM用于HBV急性感染的诊断价值。因此,在临床实验室,一定要使用要求对标本做1:1000稀释的试剂盒进行检验,从而保证相应检测项目结果的可靠性及临床应用价值。
(2)改变酶标抗体:由于RF结合的是IgG的Fc片段,如果将待酶标的抗体的F,片段酶切夫除,仅留下具有特异结合功能的F(ab’)2部分标记酶,则在测定中即可避免RF的干扰。
(3)标本中RF用变性IgG预先封闭:将经热变性(63℃,10min)的动物如兔、羊等的IgG加入到标本稀释液中,或是将该变性IgG连接至一颗粒固相如聚苯乙烯微球或微孔,然后加入临床血清标本,反应后,再吸出标本进行检测。此外,在测定特异IgM时,也可使用抗人IgG去除临床标本中RF和IgG。
(4)测定抗原时,可在标本中加入可使RF降解的还原剂:如2—巯基乙醇。2—巯基乙醇等还原剂可使抗体内的巯基裂解,因而可以去除RF的干扰,但只适用于抗原测定。
(5)包被或酶标二抗使用特异的鸡抗体IgY:RF不与鸡IgY反应,如果包被和酶标二抗均为鸡IgY抗体,则不受标本中RF的干扰。
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可能影响ELISA结果的内源性干扰因素一般包括类风湿因子、补体、异嗜性抗体等等
避免类风湿因子RF对ELISA测定的干扰,可以:1.稀释标本 2.将待酶标的抗体的F片段酶切除,仅留下具有特异结合功能的F(ab’)2部分标记酶 3.标本中RF用变性IgG预先封闭
对于补体,可以通过对临床血清标本加热来灭活
异嗜性抗体可以通过在标本或标本稀释液中加入过量的动物Ig来封闭
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1.异嗜性抗体
(1)使用特异的兔F(ab’)2。片段作为固相或测定酶标抗体。
(2)在标本或标本稀释液中加入过量的动物Ig,封闭可能存在的异嗜性抗体。但加入量不足或亚类不同时无效。
(3)使用靶特异的非Ig亲和蛋白(affibody)替代固相或酶标抗体之一。采用噬菌展示来自单个金黄色葡萄球A蛋白(SPA)联合文库的人IgA结合亲和蛋白,用于IgA的测定,不受异嗜性抗体的影响。
2.由抗鼠抗体引起的干扰
(1)使用的特异的抗体(F,。bf):片段作为固相或测定酶标抗体。
(2)在标本或标本稀释液中加入过量的鼠Ig,封闭可能存在的抗鼠抗体。
(3)使用特异的鸡抗体IgG作为固相和测定抗体。鸡IgG不与人抗鼠抗体反应。因而,用其作为固相或酶标抗体不会出现假阳性结果。
3.自身抗体 自身抗体如抗甲状腺球蛋白、抗胰岛索等,能与其相应靶抗原结果形成复合物,在Elisa方法中可干扰相应原抗体的测定。为避免以上情况出现,可在测定前用理化方法将其解离。
4. 溶菌酶溶菌酶可与等电点较低的蛋白有强的结合能力。免疫球蛋白等电点约为5,因此,在双抗体夹心法Elisa测定中,溶菌酶可在包被的IgG和酶标的IgG间形成桥接,从而导致假阳性。因此,为保证Elisa测定的可靠性,有必要从标本中去除溶菌酶或将其封闭,Cu2+离子和卵白蛋白可有效地封闭溶菌酶,防止其连接IgG。
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