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亚二倍体分析法检测细胞凋亡

相关实验:基于流式细胞术检测细胞凋亡

最新修订时间:

简介

亚二倍体分析法是利用亚二倍体 DNA 染料与 DNA 结合,检测细胞内 DNA 含量的变化,常用的染料是碘化丙啶(propidium iodide,PI)。

材料与仪器

器材:CO2 培养箱、生物安全柜、倒置显微镜、离心机及流式细胞仪。

试剂:

① 含 10%FBS 的 RPMI 1640 培养液。

② 人交联重组可溶性 FasL(rhFasL)。

③PI 染色液 PI 0.5 mg、RNase 0.2 mg、1.0%Triton- 100、生理盐水 6.5 ml、枸橼酸钠 10 mg、加蒸馏水至 95 ml,调 pH 至 7.4,定容为 100 ml,放于棕色瓶中,4℃、避光保存。

④ 70% 预冷乙醇


步骤

亚二倍体分析法检测细胞凋亡的基本过程可分为如下几步,本方法以检测 FasL 诱导细胞凋亡为例介绍亚二倍体分析法:

A. 实验分组凋亡组,收集细胞,调细胞密度为 1x106/ml。

于 6 孔板中加 HL60 细胞液 2 ml,加 rFasL 溶液至终浓度为 300ng/ml,补加含 10%FBS 的 RPMI 1640 培养液至总体积为 3 ml,

于 37℃、5% CO2 培养作用 4 小时;阴性对照组,含 10%FBS 的 RPMI 1640 培养液培养细胞。


B. 在倒置显微镜下观察细胞凋亡情况。然后,依次收集每孔细胞悬液,加入 5 ml PBS,于 4℃ 900 g 离心 8 分钟,弃上清。

C. 加入 5 ml 预冷的 70% 无水乙醇,于 4℃ 固定至少 4 小时,并间断性摇动。于 4℃ 以 1000 g 离心 8 分钟,弃上清。用 PBS 以 1000 g 离心 8 分钟,洗 2 次,弃上清。

D. 加入 0.5 ml PI 染色液,于室温避光孵育 30 分钟。移入流式管内备用。

E. 流式细胞仪检测 通过 FSC/SSC 散点图收集 10,000 个细胞,采用设门技术排除粘连细胞和细胞碎片,分析 PI 荧光直方图上细胞周期的百分率及凋亡细胞百分率。


注意事项

1. 细胞必须固定,固定用预冷的 60%-80% 乙醇,于 4℃ 至少固定 4 小时。固定细胞在低温可长期存放。

2. 固定的细胞必须充分洗涤以使小分子 DNA 片段渗透出来。

3. 固定的细胞必须用 RNA 酶进行处理以消除细胞内 RNA 对测定结果的影响。RNA 酶必须经高温预处理灭活 DNA 酶等。

4. 染色必须避光。

5. 严格细胞计数,细胞过多会影响染色和检测结果。

6. PI 具有毒性,有潜在的致畸作用,操作时要。

7. 设立正常对照,通常以正常人外周血白细胞作标准参照,确保倍体计算的准确性。


来源:丁香实验

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