脂肪细胞诱导分化时IBMX和地塞米松的浓度可以改变吗？有没有大佬做诱导分化效果比较好，分化速度适中的配方，求求

首先让细胞长满以后，接触抑制2天(是细胞退出生长周期)，加入含有IBMX(一般使用浓度0.5mmol/L)，DEX(地塞米松，一般使用浓度是 1umol/L)和insulin(胰岛素，一般使用浓度1-10ug/ml)的培基2天，再换成只含胰岛素的培基2天，然后每两天换液(普通培基)。这 是分化的步骤，但是最关键的是细胞的传代次数，细胞传代次数较多，分化率很低。一般说不能超过20代，最好在10代以内。诱导分化中，细胞的传代数和状态是最重要的。

待细胞长满至80-90%，融合2天(融合的意思是指让细胞接触抑制，就是长满后换液让其再长两天)后，加含终浓度为0.5mmol/L IBMX(储存液浓度0.5mmol/L)、终浓度为1umol/L(储存液浓度为1mg/ml(2.5mmol/L))DEX和终浓度为10ug/ml的胰岛素的10%小牛血清高糖DMEM培养48h;(诱导剂临用时再加到培液中混匀)

48h后换含终浓度为10ug/ml的胰岛素的10%小牛血清高糖DMEM培养液再培养48h，48h后再换10%小牛血清高糖DMEM继续培养，2天后换培养液一次，诱导分化8～12天3T3-L1细胞90%多呈成熟脂肪细胞表型，可用于实验。

一般建议加入含有IBMX（使用浓度为0.5mM）、地塞米松（使用浓度为1μmol/L）、胰岛素（使用浓度为1-10μg/mL）的培养液培养2天；

在脂肪细胞的诱导分化过程中，IBMX和地塞米松的浓度确实可以进行调整。然而，这些调整需要根据实验条件和特定细胞系进行优化。在许多实验中，常用的浓度是0.5 mM的IBMX和1 μM的地塞米松，但这并不意味着在所有条件下都适用这个浓度。

关于诱导分化效果较好、分化速度适中的配方，以下是一个通用的3T3-L1前脂肪细胞分化配方：

为细胞培养基添加如下诱导因子：

0.5 mM IBMX（异丁基甲磺酰胺）

1 μM 地塞米松

10 μg/ml 胰岛素

10% FBS（胎牛血清）

将细胞在37°C和5% CO2条件下培养。

48小时后，去除IBMX和地塞米松，将培养基更换为含有10 μg/ml胰岛素和10% FBS的培养基。然后继续培养。

每隔2天更换培养基，直到细胞完全分化。

这个方案可以作为起始点进行实验。如有需要，可以对浓度进行适当调整，找到适合您实验条件和细胞系的最佳浓度。