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动物适应性饲养1周,实验前禁食12h。按50mg/kg体重的剂量经腹腔注射戊巴比妥钠麻醉后,将动物仰卧固定于手术板上,腹部手术区常规消毒与去毛,无菌条件下用手术刀在腹壁作一长约2cm切口,经切口进腹在回盲瓣远端分离并以3号丝线结扎盲肠,用18号注射针头于结扎端穿孔2次,并挤出粪便少许,然后用4号丝线间断缝合腹膜及皮肤,同时立即皮下注射生理盐水50ml/kg体重抗休克。
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在建立脓毒血症细胞模型时,可以采用以下步骤:
1.选择细胞系:选择适合研究脓毒症的细胞系,例如单核细胞系(如THP-1、U937)、树突状细胞系(如DC2.4)或淋巴细胞系(如Jurkat、Raji)等。其中,THP-1细胞是建立脓毒症细胞模型最常用的细胞系之一。
2.刺激细胞:将细胞刺激以模拟感染状态,可以使用大肠杆菌、金黄色葡萄球菌等病原菌或它们的成分如LPS(脂多糖)刺激细胞。刺激时间和刺激剂量需要进行优化和控制,以模拟不同程度的感染状态。
3.检测生理指标:在模拟感染状态后,检测细胞中的生理指标,如细胞存活率、细胞因子分泌、凋亡率、ROS(活性氧)水平等,以评估细胞模型的有效性和稳定性。
4.检测分子机制:通过Western blot、Real-time PCR等技术检测相关分子机制,如NF-κB信号通路、TLR(Toll-like receptor)信号通路等的激活和参与情况,以深入研究脓毒症的分子机制。
需要注意的是,脓毒血症细胞模型只能模拟感染状态下的生理和分子机制,不能完全代替动物模型。因此,在使用脓毒血症细胞模型研究脓毒症时,需要综合考虑动物模型和细胞模型的结果,以更好地理解脓毒症的发生机制。
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