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问
怎么才能鉴定质粒有没有被双酶切?
迟C迟
跑胶,用未酶切的质粒、单酶切的做参照,条带大小是否符合你的预期。
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问
小提质粒的产物始终很低,可能是什么原因?
Keven轩
可以试试热洗脱冷结合,最后一步离心除去乙醇之后在60度金属浴上烘干5min让乙醇充分挥发,同时减少洗脱液的量
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问
在用无水乙醇沉淀DNA时,为什么一定要加NaAC或NaCL至最终浓度达0.1-0.25MOL/L?
bamboopiggy
乙醇沉淀DNA需要盐离子,用金属离子屏蔽DNA上磷酸的负电荷,降低DNA分子间的斥力,才能沉淀完全.所以需要加NaAC或NaCL
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问
为什么要用pH8的Tris水溶液饱和酚?
bamboopiggy
一、水饱和酚又叫水平衡酚。水饱和酚的PH小于7,一般是PH为5.0左右,通常与异硫氢酸胍一起使用,用于细胞RNA的提取,在酸性环境中,DNA在酚相,RNA在水相。两者就分开了。二、Tris饱和酚一般PH大于7.8,用于DNA的提取。其中,酚是强的蛋白变性剂,可以使细胞或组织中的蛋白质变性析出。 而Tris的主要作用是防治止酚类氧化,若酚类氧化,则会形成醌(两个苯环),醌含有强自由基,会破坏核酸结构
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问
如果最有效的提高DNA提取的纯度?
bamboopiggy
1.细胞充分裂解 2 沉淀DNA时加足量甚至过量的异丙醇,3 ,用rna酶处理,去掉其中的rna。 4,晾干过程要充分。
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问
怎么保存酚不被空气氧化?
小露娜i
加入巯基乙醇和8-羟基喹啉至终浓度为0.1%。8-羟基喹啉是带有淡黄色的固体粉末,不仅能抗氧化,并在一定程度上能抑制Dnase的活性。用Tris PH8.0水溶液饱和后的酚,最好分装在棕色小试剂瓶里,上面盖一层Tris水溶液或TE缓冲液,隔绝空气,也可以往瓶里充入氮气,防止与空气接触而被氧化。然后保存在4℃或-20℃冰箱中,可以保存几个月不会变色。
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问
为什么不能用质粒DNA来提取基因组DNA?
未来9
基因组DNA的抽提,一般不会用到质粒抽提的试剂盒,原因是由于两者的原理完全不同
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问
DNA纯化的目的是什么?
未来9
目的是回收 得到纯的目的DNA片段,去除影响DNA连接酶活 性的物质以及其它的DNA片段
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问
基因组DNA提取使用试剂盒如何避免污染?
未来9
所有试剂瓶盖须盖紧以防止蒸发和污染,试剂避免受到微生物的污染,因为蛋白水解酶的干扰将导致出现错误的结果。如果样品不立即使用,应将其分成小部分-70℃保存,避免反复冷冻。尽可能的不要使用溶血或高血脂血。如果血清中大量颗粒,检测前先离心或过滤。不要在37℃或更高的温度加热解冻。应在室温下解冻并确保样品均匀地充分解冻。小心吸取试剂并严格遵守给定的孵育时间和温度。请注意在吸取标本/标准品,酶结合物或底物时
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问
呈粉红色的酚可以使用吗?
bamboopiggy
不能用了,苯酚暴露在空气中被氧气氧化为醌而呈粉红色。所以还是再买一瓶吧
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问
为什么用酚与氯仿抽提DNA时,还要加少量的异戌醇?
dxy_9n80neqq
在抽提DNA时,为了混合均匀,必须剧烈振荡容光焕发器数次,加入异戌醇能降低分子表面张力,减少在振荡时气泡的产生;配比一般是氯仿与异戌醇为24:1,也可以采用酚,抽提DNA去除蛋白质时,由于酚与氯仿是互溶的,可用氯仿第二次变性蛋白质,此时一起将酚带走。也可以在第二次抽提时,将酚与氯仿混合(1:1)使用
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问
如何才能去提高DNA的提取率?
bamboopiggy
减少洗脱体积,增加洗脱次数。再就是裂解细胞要严格按照protocol来,别裂解过了,也别裂解的不够。
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问
DNA提取洗脱体积太小,50ul会有什么影响?
Keven轩
回收的DNA浓度会比较高,但是量不多
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问
为什么在保存或抽提DNA过程中,一般采用TE缓冲液?
bamboopiggy
TE缓冲液是弱碱性,对DNA的碱基有保护性,(DNA在TE中的稳定性较好,不易被破坏其完整性或产生开环及断裂),包括提取好的DNA也要放在TE缓冲液中保存.
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问
在保存或抽提DNA过程中,需要哪种缓冲液? 如果需要,哪种缓冲液比较好?
Keven轩
一般是用1X PBS磷酸盐缓冲液
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问
为什么有时DNA提取量比较少?有没什么办法解决?
Keven轩
用个质量比较好的进口试剂盒就行
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问
瞬转和稳转,提的DNA有区别吗?
Keven轩
提的DNA经PCR及琼脂糖凝胶电泳后没区别,都有目的基因的阳性条带。一般像构建细胞系用稳转,想快速获得大量目的基因表达产物用瞬转
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问
求助HepG2细胞培养基背景里面黑点及条状物是什么啊,有没有什么办法去除😭
bamboopiggy
这些小黑点是细胞自己分泌的,因为hepG2 有点挑血清,血清不好,它就会分泌一些物质,状态就稍微差点。
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问
购买之细胞冷冻管经解冻后,为何会发生细胞数目太少之情形?
Keven轩
大多是因为在冻存以及复苏的时候,DMSO对细胞产生了毒性,导致细胞死亡,或者是低温导致细胞内液结冰产生冰晶损伤,建议使用全血清和DMSO作为冻存液,并且“慢冻快复”。而且刚复苏时离心转速可以高一些
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问
大鼠原代施万细胞分离培养如何进行?
Eason老歌迷
目前最简便、快捷分离纯化施万细胞的方法是差速贴壁法,即根据不同细胞在培养器皿上贴壁速度的差异,去除成纤维等污染细胞,以获得高纯度施万细胞。细胞经0.125%胰蛋白酶消化后,制成单细胞悬液,置于未覆层的培养皿中,37℃,5%CO2孵箱中培养30min后,将未贴壁的细胞悬液转种于另-未包被的器皿中,30min后重复以上操作,最后将未贴壁细胞按照合适的密度接种在多聚赖氨酸或Laminin包被的培养器皿中
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