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细胞免疫化学染色的主要步骤包括:
1. 细胞爬片制备:将细胞铺展在玻片上,可以制成悬液滴片或细胞爬片。
2. 固定:使用甲醛或乙醇等固定液固定细胞,保持细胞形态和目标抗原。
3. 渗透处理:使用 Triton X-100 等渗透剂增加细胞膜通透性,让抗体进入细胞。
4. 封闭:使用牛血清等封闭液,封闭非特异性抗原结合位点。
5. 一抗孵育:加入特异性一抗,与目标抗原特异性结合。
6. 二抗孵育:加入标记的二抗,与一抗结合显色。常用标记有酶标记、荧光标记等。
7. 彩现:加入底物显色,如DAB显色。或直接荧光观察。
8. 复染:如用血红素对细胞进行反染,观察细胞形态。
9. 封片:加盖玻片,封固样本。
10. 镜下观察:通过光镜或荧光镜观察结果。
按照这些步骤,可以完成细胞的免疫荧光或免疫组化染色。
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1.取出细胞切片,迅速放入冷丙酮中固定20-30分钟。
2.在蒸馏水中浸泡两次,每次约5分钟。
3.在冲孔液中浸泡5分钟。 4.在蒸馏水中浸泡两次,每次约5分钟。
5.使用普通血清密封:从染色罐中取出切片,擦去切片背面的水分和切片正面组织周围的水分(以保持组织湿润),并添加正常的山羊血清或兔血清(与二抗相同)动物血清)处理,并在37°C下保持约15分钟。
6.再次添加一抗:用滤纸吸收血清,无需洗涤,直接在37℃下添加一抗约2小时(也可以在4℃的冰箱中放置过夜)。
7.在PBS缓冲液中:5分钟,2次(置于摇床上)。
8.在37℃,40分钟内逐滴添加生物素化的二抗。
9.在PBS缓冲溶液中:约5分钟,2次(置于摇床上)。
10. 37℃40分钟,再次滴加第三抗体(SAB复合物)。
11.在PBS缓冲溶液中:5分钟,2次(置于摇床上)。
12. DAB显色,在显微镜下观察,并及时终止(终止自来水冲洗)。
13.用自来水(纯净水)彻底冲洗。
14.苏木精复染,室温下30秒钟,用自来水冲洗。
15.用自来水冲洗15分钟,以恢复蓝色。
16.梯度酒精脱水:80%,2分钟,95%,2分钟,100%,2次,5分钟。
17.二甲苯透明:I和II(二甲苯)各5分钟18.安装:加拿大胶(或中性胶)。
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细胞爬片铺板→处理细胞→固定细胞→孵育抗体→清洗细胞→观察
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细胞固定,破膜,封闭,一抗孵育,二抗孵育,染核,观察