请问一下，SDS-PAGE蛋白质电泳，最近跑出来的胶都是这样的，以前不会，更换了配胶的母液，Buffer，还是一样，有哪位大神知

1. 胶的凝结不好，例如有花纹特别是浓度高的胶在冬天温度较低的情况下，在分离胶的下部有波浪样的花纹，凝胶不均匀。解决方法：加大TEMED和过硫酸胺的量，使其凝结速度加快。同时洗干净玻璃板，防止有残留的胶干结在玻璃板上。
2. 胶不凝，解决方法：温度较低时加大TEMED和过硫酸胺的量，过硫酸胺必须新鲜配制。如若还是不行重新配制一下缓冲溶液。
3. 胶易碎，例如浓度较高的胶在染色和脱色过程以及扫描过程中破裂。解决方法：首先在上述过程中一定要动作轻缓，其次在室温较高的情况下可以适当减少TEMED和过硫酸胺的量。
4. 电泳完后胶上有很多长条纹的杂带，解决方法：建议电泳缓冲液不要回收利用。配制胶的溶液一定要纯。

5. 2.凝胶时间不对

   通常胶在30分钟到1小时内凝。如果凝的太慢，可能是TEMED，AP剂量不够。 如果凝的太快，可能是AP和TEMED用量过多，此时胶太硬易裂，电泳时易烧胶。

   3.浓缩胶与分离胶断裂、板间有气泡对电泳的影响

   前者主要原因是拔梳子用力不均匀或过猛所致；后者是由于在解除制胶的夹子后，板未压紧而致空气进入引起的，一般对电泳结果不会有太大的影响。

   4.样品的处理

   根据样品分离目的不同，主要有三种处理方法：还原SDS处理、非还原SDS处理、带有烷基化作用的还原SDS处理。

   1. 还原SDS处理：在上样buffer中加入SDS和看DTT（或Beta巯基乙醇）后，形成SDS与蛋白相结合的分子。
   2. 带有烷基化作用的还原SDS处理：碘乙酸胺的烷基化作用可以很好的保护SH基团，得到较窄的谱带；另碘乙酸胺可捕集过量的DTT，而防止纹理现象的产生。100uL样品缓冲液中加入10uL20%的碘乙酸胺，并在25℃下保藏30min。
   3. 非还原SDS处理：生理体液、血清、尿素等样品，一般只用1%SDS沸水中煮3min，未加还原剂，因而蛋白折叠未被破坏，不可作为测定分子量来使用。

   5.条带两边翘起中间凹下的原因（︶）

   在较厚的凝胶中，由于凝胶不均匀冷却，中间部分凝固不好。

   电泳系统温度偏高。

   处理办法：待其充分凝固再作后续实验。

   6.条带两边向下中间鼓起的原因（︵）

   一般原因是两板之间的底部间隙气泡未排除干净，或聚合不完全。

   处理办法：可在两板间加入适量缓冲液，以排除气泡。

可以考虑是一抗或者二抗浓度过高。

是你的玻璃板和胶之间有缝隙了。考虑换一下玻璃板

有可能是样本降解了，建议重新提蛋白