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如何针对致泻性大肠ETEC的stp和sth基因设计特异性强且有效的引物和Taqman探针?能够使Ct值小一点,荧光强度值大一点

相关实验:实时荧光定量 PCR(realtime PCR)

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李艳_dxhs

采用国标所给的基因序列找到ETEC的整个stp和sth基因,然后用primer express3.0.1手动设计引物和Taqman探针,序列大小118~122。在合成之后用takara的试剂进行qPCR扩增,发现20ng/微升浓度DNA扩增的stp和sth基因Ct值很大(大于28),比lt基因大了10个Ct值。用此引物做普通PCR电泳看有条带但没有国标中的引物扩增的亮。王芳妹的文献中有扩增曲线还行但单独拿引物PCR电泳结果无目标条带。把这两个st基因在DNAMAN中看二级结构,发现很多二级结构。序列比对发现这两个基因同源碱基也较多,怎么设计区分这两个基因的引物探针并且提高扩增效率?

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2 个回答

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Miracle星

有帮助

1、引物长度一般在15-30bp。常用的为18-27bp,因为过长会导致其延伸温度大于74℃,不适于Taq DNA聚合酶进行反应。

2、引物GC含量一般为40%-60%, 45-55%为宜,GC含量过高或过低都不利于引发反应,上下游引物GC含量和Tm值要保持接近,一般Tm值不超过5℃

3、引物所对应的模板序列的Tm值在55-80℃之间,最好为72℃左右

4、引物的延伸是从3′端开始的,不能进行任何修饰,且 3’端的碱基一般不用A;引物3’端出现3个以上的连续碱基,如GGG或CCC,或者引物3’端的互补、二聚体或发夹结构也可能导致PCR反应失败。

5、碱基要随机分布,且引物自身和引物之间不能有连续4个碱基的互补。

6、尽量在基因的编码区(CDS序列)上设计引物,限制基因组DNA扩增。

7、使用BLAST检索,确认引物特异性。

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Eason老歌迷

有帮助

引物设计,有一个原则就是最好不要有二级结构。你可以查查文献看看。在设计探针和引物时,要同时考虑在两条链上设计引物与探针。但要注意的是,在哪条链上设计探针时,就应靠近在同一条链上设计的引物(即上游引物)。这样,可保证在将来扩增时,即便没有完全扩增,也有荧光信号报告出来。

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