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【分享】RT-PCR 经验之我谈

丁香园论坛

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看到论坛上有很多朋友询问RT-PCR的重复性问题,说明这里面还是有很多问题的,于是 想跟大家分享一下自己做PCR的经验:

1. 总RNA的提取: 材料来源一般为细胞和组织,细胞相对比较单一,蛋白污染较小,TRIZOL法提取结果 A260/A280 结果一般都在1.8-2.1之间;组织的成分较复杂,污染多,提取较纯的RNA有一定难度, 我觉得以下地方需注意:
1)最好新鲜取材,不能马上做的标本可以-70度保存,短时间内也不会有什么影响。
2)研磨的手法一定要正确,如果不能彻底把组织研碎(肉眼观看无颗粒),很可能会影响你RNA的浓度,50-100mg的组织提取的RNA用20ul水稀释后应该有2-4ug/ul 的浓度,当然最好在冰上研磨,这样可以防止RNA的降解,但是我在常温下做,好像浓度也不差。
3)加氯坊离心后上清不能吸太多,宁缺勿滥,一般吸上清的1/2,最好不超过2/3 ,我一般吸200-300ul 觉得就可以了。

其实RT-PCR对RNA的要求不是很高的,电泳不能跑出两条带也没关系,逆转录后照样可以p出来,因为PCR还是相当灵敏的,很少的模板链就可以了,所以只要RNA降解得不是太厉害就没关系。这样的RNA应该可以往下做: A260在 0.1-1.4之间 ,A260/A280 在1.7-2.0 之间,浓度在 1.5-5.0之间。

2.逆转录。 逆转录的技术我觉得较成熟,一般的mRNA加oligo(dt)和逆转录酶都可以做出来,我用小公司的试剂盒做都比较稳定,更不用说invitrogen和TAKARA等大公司了。

3. PCR . 这是个很精细的体系,酶 , dNTP ,Mg的浓度适中才能达到最好的效果,有人说PCR不能像炒菜那样,喜欢多放点盐就多放点,喜欢多放点油就多放点,PCR对成分很在乎,这就是PCR难重复的原因,如果总体系少于25ul ,各种成分的量就更不好控制,因为0.3ul ,0.5ul ,本身加样的时候误差就很大,所以少于25ul的体系就难重复了。
1) 模板cDNA ,20ul 的逆转录体系取1-2ul足够,我一般取2ul。
2)dNTP ,标准的PCR体系有dNTP的浓度,换算过来加上所需的体积。
3)Taq 酶 ,50ul的总体系加1ul足够。
4)buffer ,有些buffer里含有Mg离子,自己换算一下,让最后的Mg离子浓度能在1.5左右。
5)不含Mg的buffer要单加Mg
6)上下游引物 ,一般自己把引物公司合成的引物稀释成10pmol/ul,1-2ul即可,因为标准的PCR体系需要10-100pmol 。
7)余下成分用水补平。

本人觉得影响pcr最大的因素是: Mg 浓度,退火温度 ,循环数 ,其中Mg浓度为重中之重,有时候甚至有点苛刻, 浓度过高抑制taq酶,过低taq酶没用,就像那个谁形容的美女,多一分则太肥,少一分又太瘦 。所以建议做个梯度 ,找到最适浓度。 退火温度嘛,应该好摸,一般的实验室都有梯度PCR仪的,至于循环数 ,30-40个,试情况自己定。 这些东西关键是自己摸,多摸几个,不用十八摸那么夸张,七八摸应该就可以出来了。

纯属个人观点,希望对大家有点帮助,并欢迎指正。
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