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外源基因在酵母细胞中的表达

相关实验:外源基因在真核细胞中的表达

最新修订时间:

简介

酵母是理想的单细胞真核模式生物,具有完整的亚细胞结构和严密的基因表达调控机制。酿酒酵母作为第一个真核生物已于1996年完成了全基因组测序。


2009年5月,巴斯德毕赤酵母GS115株1-4号染色体的全序列测定工作也已完成。上述工作为酵母作为基因表达系统的广泛应用奠定了坚实的基础。


酵母生长迅速,易于进行遗传操作,可有效转化外源基因并且长期稳定表达,表达的蛋白质可有一定的翻译后修饰,具有生物学活性。


其缺点之一是蛋白质糖基化与真核细胞显著不同,常常含有过多甘露糖的糖链;二是缺乏加工某些高等真核蛋白质的细胞成分。

原理

常用的酵母细胞表达载体多为穿梭质粒载体,它们可在大肠埃希菌中进行筛选和扩增,随后在酵母细胞中进行表达。应用最广泛的酵母细胞表达载体是由pBR322衍生而来的,它含有可保证其在大肠埃希菌中具有高拷贝数的复制起始位点(ori)及amp'、tet'等抗生素筛选标记。

材料与仪器

仪器:

摇床、低温离心机、孵育箱、水浴锅

试剂:

酵母提取物、蛋白胨、葡萄糖、琼脂、Difco氮原、NaOH

山梨醇缓冲液、酵母裂解酶、乙酸钾、异丙醇、TE、乙酸钠、LiAc

步骤

外源基因在酵母细胞中的表达的基本过程可分为如下几步:


首先选择合适的酵母表达载体,通过常规基因操作插入外源DNA序列,验证插入序列的方向和序列的正确性(酶切、PCR或测序),扩增并纯化质粒。将携带外源基因的质粒载体转染酵母宿主细胞。


一般可用乙酸锂电转化法(酿酒酵母)、电穿孔法(毕赤酵母)等。阳性重组子可采用抗性标记进行筛选。最后应用电泳染色或免疫印迹法检测外源蛋白质的表达情况,并应用不同的生物学方法分析蛋白质活性。


一、酵母培养基的配制


YPD 培养基


10.0 g酵母提取物、20.0 g蛋白胨 20.0 g葡萄糖

1000 ml蒸馏水、20.0 g琼脂(制备固体琼脂培养基时加入)

121 ℃高压灭菌15 min(葡萄糖溶液在灭菌后加入)


SD培养基


1.0 g Difco氮原(yeast nitrogen base, w/o amino acids)

12.0 g葡萄糖、0.50 g synthetic complete drop out mix

600 ml蒸馏水、10.0 g琼脂(Difco) (制备固体琼脂培养基时加入)


将各种试剂(琼脂除外)加入水中溶解,用10 mol/L NaOH调pH至5.6,121 °C高压灭菌15 min(葡萄糖溶液在灭菌后加入)


二、酵母质粒DNA的提取


A、接种酵母到10 ml YPD(yeast extract-peptonedextrose)液体培养基中,30 ℃下摇床培养过夜。


B、取5 ml培养物离心(2000 g,5 min)收集细胞。


C、细胞以0.5 ml山梨醇缓冲液(1 mol/L)悬浮,悬浮液转入另一离心管。


D、加入20 µl酵母裂解液(1 mol/L山梨醇缓冲液,含酵母裂解酶0.2~2 U/ml),37 ℃孵育1 h。


E、离心收集细胞(2000 g,1 min),弃上清。


F、细胞重悬于0.5 ml山梨醇缓冲液中。


G、加入10% SDS 50 µl,盖紧离心管盖,迅速颠倒混匀;65 ℃孵育30 min。


H、加入5 mol/L乙酸钾0.2 ml,冰浴1 h,4 ℃高速离心5 min去除细胞碎片。


I、室温将上清液转移至另一离心管中,加入等体积异丙醇(室温)沉淀核酸(此步骤不要超过5 min)。


J、高速离心10 s回收沉淀的核酸,弃上清,沉淀物在空气中干燥10 min。


K、沉淀物重新溶解于300 µI TE (pH 8.0,含20 µg/ml RNA酶)中,37 ℃孵育30 min。


L、加入3 mol/L乙酸钠(pH 7.0)30 µl,混匀;加入0.2 ml异丙醇,混匀;高速离心20 s获得DNA。


M、弃上清,沉淀物在空气中干燥10 min。将DNA溶解于150 µl TE(pH 8.0)中备用。


三、酵母细胞外源DNA乙酸锂导入法(酿酒酵母)


A、接种酵母细胞于2~5 ml YPD或SD液体培养基中,30 °C摇床培养过夜。


B、接种于50 ml YPD培养基,细胞密度为5X106/ml。于30 °C、200 r/min摇床中培养至细胞密度为2x107/ml,转入50 ml灭菌离心管,3000 g离心5 min。


C、弃上清,用25 ml灭菌水重悬细胞并再次离心,弃上清。用1 ml 100 mmol/L LiAc 重悬细胞并将悬浮液转入1.5 ml微量离心管。


D、高速离心15 s沉淀细胞,用移液枪吸去上清。加入适量100 mmol/L LiAc重悬细胞,使其终体积为500 µl(细胞密度2X109/ml,一般加入约400 µl 100 mmol/L LiAc)。


E、取待转化质粒溶液,煮沸5 min后立即置于冰上。


F、取50 µl细胞悬浮液至微量离心管,离心15 s,沉淀细胞并除去LiAc。


G、按如下顺序加入试剂,制备转化混合物:


PEG(50% w/ v) 240 µl
1.0 mol/L LiAc 36 µl
SS-DNA(2.0 mg/ml) 50 µ1
质粒DNA(0.1~10 µg) X µ.,l

灭菌水 34~X µ.,I


H、剧烈璇涡混合约1 min至沉淀细胞完全混合,30 ℃水浴30 min,42 ℃水浴热休克30 s。


I、6000 r/min离心15 s,小心吸去上清液,用1 ml灭茵水轻轻吹打以重悬细胞。


J、吸取2~200 µl转化混合物铺于SD琼脂培养皿,30 ℃培养2~4 d。

注意事项

作为基因表达宿主,所用酵母必须具备下述条件:


①安全无毒,不致病;

②具有较清楚的遗传学背景,易进行基因操作;

③容易导入外源DNA;

④培养条件简单,容易进行高密度发酵;

⑤有较强的蛋白质分泌能力;

⑥有类似高等真核生物的蛋白质翻译后修饰功能。

来源:丁香实验

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