简介
RNA 结合蛋白免疫共沉淀法是基因调控在细胞复杂的生命历程(如发育、分化以及对环境的应答)中发挥重要的作用。随着对 RNA 功能的认识,人们对 RNA-蛋白质的相互作用越来越感兴趣。对其的研究不仅涉及转录、翻译、剪切等研究比较透彻的领域,在 RNA 干扰、非编码 RNA 的基因调控等一些新的领域也有所涉及,其中一种调控机制是通过 RNA 结合蛋白(RBP)来调控 mRNA 的翻译过程。
材料与仪器
器材:离心机、磁珠、NanoDrop。
试剂:
① 完全 RIP 裂解液:100 μL 裂解液(150 mmol/L KC1,25 mmol/L Tris pH 7.4,5 mmol/L EDTA,0.5 mmol/L DTT, 0.5% NP40)现加 0.5 μL 蛋白酶抑制剂,0.25 μL RNA 酶抑制剂。
② RIP 免疫共沉淀缓冲液:860 μL RIP 清洗液, 35 μL 0.5 mol/L EDTA, 5 μL RNA 酶抑制剂。
③ 蛋白酶 K 缓冲液:117 μL RIP 清洗液, 15 μL 10% SDS,18 μL 蛋白酶 K(10 mg/mL)。
步骤
RNA 结合蛋白免疫共沉淀法的基本过程可分为如下几步:
(一)制备细胞裂解液
A. 收集细胞:
① 贴壁细胞:用 10 mL 预冷 PBS 洗细胞 2 次,将细胞从培养瓶中刮下,转移至离心管中,计数,4 ℃,1500 r/min 离心 5 分钟,弃上清收集细胞。
② 悬浮细胞:收集细胞到 15 mL 离心管中,计数,4 ℃,1500 r/min 离心 5 分钟。弃上清,用 10 mL 预冷 PBS 洗 2 次。
B. 加入准备好的 RIP 裂解液,混匀,在冰上放置 5 分钟。每份样品留存 200 μL 细胞裂解液转移至无核酸酶的离心管中,-80℃ 保存。
(二)准备磁珠
A. 上下颠倒将磁珠完全混匀,转移 50 μL 磁珠至离心管。
B. 加入 500 μL RIP 清洗液,混匀。
C. 将离心管置于磁性分离器中,弃上清。
D. 再加入 500 μL RIP 清洗液,混匀。
E. 再次将离心管置于磁性分离器中,弃上清。加入 100 μL RIP 清洗液,以及 5 μg 抗体。
F. 室温旋转孵育 30 分钟。
G. 离心,并将离心管置于磁性分离器中,弃上清。用 500 μL RIP 清洗液洗 2 次。
(三)免疫共沉淀 RNA 结合蛋白-RNA 复合物
A. 每管加入 900 μL RIP 免疫沉淀缓冲液。
B. 将第一部分已制备好的 RIP 裂解液解冻,4 ℃,14000 r/min 离心 10 分钟。取出 100 μL 上清至准备好磁珠的离心管内,使终体积为 1 mL。4 ℃ 旋转孵育过夜。
C. 剩下上清取出 10 μL 作为 Input,-80 ℃ 冻存。
D. 每管用 500 μL RIP 清洗液洗 6 次。
(四)纯化 RNA
A. 用 150 μL 蛋白酶 K 缓冲液重悬磁珠。
B. Input 样品也加入蛋白酶 K 缓冲液,至总体积 150 μL。
C. 在 55 ℃ 震荡孵育 30 分钟。
D. 离心,将离心管置于磁性分离器中,转移上清至新管子中,再加入 250 μL RIP 清洗液。
E. 各管加入 400 μL 酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)。涡旋 15 秒,14000 r/min 离心 10 分钟。
F. 小心转移 350 μL 液相到新管中。加入 400 μL 氯仿。涡旋 15 秒,14000 r /min 离心 10 分钟。
G. 小心转移 300 μL 液相到新管中,每管加入 50 μL 盐溶液,15 μL 盐溶液II,5 μL 沉淀增强剂,以及 850 μL 纯乙醇,混匀后 -80 ℃ 保存过夜以沉淀 RNA。
H. 4 ℃,14000 r/min 离心 30 分钟,小心弃上清。
L. 用 80% 乙醇清洗沉淀一次。4 ℃,14000 r/min 离心 15 分钟。小心弃上清,干燥沉淀。
I. 用 10~20 μL DEPC 水重悬,并置于冰上。
(五)分析免疫共沉淀的 RNA
A. RNA 可以用 NanoDrop 等仪器检测浓度及质量,然后用实时荧光定量 PCR(RT-PCR)或者芯片分析以及深度测序等方法来进行检测分析。
注意事项
1. 蛋白酶抑制剂和 RNA 酶抑制剂要现配现用。
2. 所用枪头,离心管要 RNA 酶灭活处理,避免 RNA 降解。
3. 样品避免反复冻融。所用抗体要确保质量,最好先做 IP 实验常见问题
来源:丁香实验