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方案7 二维色谱和质谱结合分离多肽混合物:离线方法

相关实验:质谱在蛋白质组学中的应用实验

最新修订时间:

材料与仪器

肽标准品 可溶性酵母蛋白或其他复杂蛋白混合物 胰酶
CaCl2 变性溶液 透析液 碘乙酰胺(IAA) 反相色谱溶剂 SCX (强阳离子交换)色谱缓冲液 三氟乙酸(TFA)
透析管 金导线 LCQDECA 离子讲质谱仪 微型四通 毛细管分流器 RP 毛细管层析柱 SCX 层析柱 SEQUEST 软件

步骤

一、可溶性酵母蛋白的酶解

1.将 1mg 冷冻干燥的可溶性酵母蛋白加入0.5 ml 的变性溶液中,37°C 溶解 15 min。

2.加入 IAA 至终浓度为 50 mmol/L,然后将样品置于暗处 30 mm,室温条件下使半胱氨酸残基烷基化。

3.样品透析:将样品溶液在 100 ml 的透析液中室温透析 lh,以除去盐和低分子量物质。

4.更换透析液,重复步骤③两次。

5.向样品中加人 20ug 胰酶,37°C 孵育 lOmin。

6.用 10 mmol/L Tris-Cl(pH8.5) 将样品稀释 2 倍(至 1.Oml),加入 CaCl2 至终浓度为 1mmol/L。用 pH 试纸验证 pH 值是否在 8 到 9 之间。

若变性液中含 SDS(步骤①),则必须使其在样品液中的终浓度低于 0.1%,以便胰酶有效消化。

7.37°C 条件下胰酶消化过夜。

8.用 2ul 的 TFA 酸化样品以终止消化,用 pH 试纸确证溶液 pH 值低于 3。

也可用其他方法来溶解(步骤①)和消化蛋白质(例如可不加 SDS,使用其他还原剂,若盐浓度很低则不用透析等)。不过在用 SCX 色谱进行多肽分离前,盐终浓度一定要低于 20 mmol/L(包括 Tris-HCl 和蛋白质水解产生的盐),且上样前需确保溶液的 pH<3。若盐浓度高于 20_〇 1/L,可用膜透析(见步骤③和④),或依制造商提供的指导用 Ql8 固相抽提(SPE) 柱(Vydac) 除盐。

二、SCX 色谱柱的准备

9.以 SCX 缓冲液和 SCX 色谱柱为基础建立 HPLC 系统。

10.设置柱流速为 200ul/min,获得空白梯度。

用于多肽洗脱的缓冲液 B 在约 5%~35% 的区间应采取平缓梯度(见表 8.12),这样可使净电荷为+2 的多肽片段(为胰酶酶解的主要产物)比线性梯度洗脱有更好的分离效果。

11.检测 SCX 柱的性能

(1)将溶于缓冲液 A 中的 200pmol 多肽标准品加至 SCX 柱上。

(2)用 UV 检测仪检测多肽在 214nm 的吸收。

应能获得 6 个完全分离的且峰宽小于 1min 的洗脱峰。

三、SCX 色谱分离酵母肽混合物

12.将酸化的(pH<3) 的酵母酶解多肽样品加到柱上,用缓冲液 A 洗柱 5~10min,直至 UV 检测峰返回基线。

13.开始梯度洗脱,每分钟收集 200ul 洗脱组分。

图 8.44 所示为利用该技术分离 Img 酵母蛋白的洗脱图谱。该技术可以分离多达 5 mg 的多肽,可根据样品量选用更大或更小的柱子。

14通过离心蒸发浓缩样品体积至 50~100ul。

四、SCX 色谱分离组分的 RPC 层析

将纳升级的反相色谱毛细管 LC 串联离子阱质谱仪,进行在线检测,其灵敏度最大,可鉴定的多肽最多。串联后,多肽的检测水平可达 1~5 fmol,并且串联质谱的获取速度达 2000 个图谱/h。

15.将一支内径 75 um、长 20 cm 的桂化毛细管拉成针尖。

有很多方法可用于拉制电喷雾的细针。最简单的方法是将一重物(用胶带纸)粘在针上,然后用微火焰将毛细管拉尖。另外,在方案 5 中介绍的激光拉针器也很有效。不过,拉好的针或预装柱也可以买到(例如,NewObjective,Cambridge,Massachusetts)。

16.取一根已拉尖的 75 um 的硅化毛细管,其中填充 5um、200A 的 C18 颗粒,柱床长度 12 cm(填充毛细管的方法详见方案 4 或方案 5)。

毛细管的针尖不仅可以填料,而且还可充当 MS 的电喷雾针。

17.按照下列步骤连接微型四通的 4 个臂:

(1)来自 HPLC 的流动相(lOOjul/min);

(2)用于分流(50ym 内径 X50 cm) 的限流毛细管;流速 99.7ul/min;

(3)一根连接到高压电源(1.8kV) 的金导线;

(4)拉尖的纳升级反相毛细管柱(步骤?),流速为 300nl/min。

18.将 HPLC 的流速调至 100u1/min,利用微型四通进行分流,使流向反相层析柱的流速为 300nl/min。

19.取经 SCX 色谱分离的组分 50ul, 离线加压上样(pressure-loadoff-line),每次加样 10 ul 或更多,然后进行梯度洗脱。

20.向 ESI 提交洗脱峰并在离子阱质谱中分析。

MS 以两种模式运行,即 MS 模式(测定多肽离子的 m/z) 和 MS/MS 模式(多肽测序)。

在短短的 1 h 的反相 LC-MS/MS 分析中,数据依赖型的 MS/MS 扫描可进行上千次肽段测序,将从 MS 扫描中所选择测序的多肽设定为「on the fly」,从每个 MS 图谱中选择 5 个肽段进行测序(裂解)。

来源:丁香实验

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