淋巴细胞分离计数实验计数偏低的原因！！

可能原因，温度是否没有调好，温度直接影响到Ficoll的比重和分离效果。在Ficoll上加入稀释外周血时，应缓慢加，以免冲散界面。Ficoll应适量，外周血应充分稀释。

多半是由于样品含有非正常密度的细胞。这些细胞的密度不同于那些来自正常人血液中细胞的密度，比如非正常血液样品、非人血液样品，或非外周血来源的样品。

淋巴细胞偏低的原因具体如下：

1、病毒感染：可以引起淋巴细胞减少。因为病毒感染会让细胞一起死亡，淋巴细胞数就可以减少。艾滋病病毒的感染，也就是HIV的感染，同样可以导致淋巴细胞减少，只不过淋巴细胞的减少速度相对较慢，也许是几年甚至更长的时间；

2、细菌感染：因为血液中的细胞主要是中性粒细胞和淋巴细胞，细菌感染导致中性粒细胞增多，则淋巴细胞就会减少，这种情况需要配抗生素治疗；

3、某些血液病也会导致淋巴细胞减少，具体种类可通过看血片和骨髓涂片及一些实验排除。

4、其它：如应用放疗、化疗药物，可能也会杀伤淋巴细胞，也表现为淋巴细胞减少。

总之，淋巴细胞降低的原因较多，应该先明确具体原因，才能找到进一步治疗和干预的措施。

淋巴细胞分离和计数实验中，可能出现淋巴细胞计数偏低和活力低的情况，可能有以下原因：

血样品质量差：外周血样品受存储时间、温度、操作误差等因素影响，可能导致样品中淋巴细胞数量减少，活力降低等问题。

分离工艺不当：淋巴细胞分离的工艺包括离心、沉淀、悬浮等过程，如果操作不当，可能会影响淋巴细胞的完整性和数量。

消化酶的使用：消化酶在分离淋巴细胞时，如果用量不足或过量，可能会导致淋巴细胞数量减少或细胞损伤。

细胞凝集或溶解：在分离和计数过程中，如果样品细胞凝集或溶解，可能会影响淋巴细胞的计数和活力。

测量方法不当：采用不同的计数方法（如涂片法、流式细胞术）可能会导致不同的结果。

针对这些问题，可以尝试以下解决措施：

选择高质量的血样品，并在规定时间内进行操作和存储。

根据分离工艺的要求，进行操作，并注意细胞完整性和数量。

在消化酶使用前，先进行试验优化，掌握消化酶的最佳使用量。

样品处理时，避免细胞凝集或溶解，可以尝试增加某些细胞存活剂或保护剂。

根据实验需要和标本特点，选择合适的计数方法，如流式细胞术。

脱水和固定的时间会影响淋巴细胞的活性