SDS-PAGE蛋白电泳跑胶，怎么能不带纹理，且胶面干净？

震荡把气泡去除，或者ph调酸一些

温度较低时加大TEMED 和过硫酸胺的量，过硫酸胺必须新鲜配制。如若还是不行重新配制一下缓冲溶液。

建议：1.加样前离心，加适量样品促溶剂；2.待其充分凝固再作后续实验；3.在两板间加入适量缓冲液，以排除气泡。

在进行SDS-PAGE蛋白电泳时，如果希望获得干净的胶面和没有纹路的凝胶，需要注意以下几点：

制备凝胶时，要仔细控制凝胶浓度和均匀混合升华剂。确保凝胶成分充分混合，凝胶浓度均匀，以避免形成空洞和不均匀的凝胶。

在电泳前，将样品彻底混合，并加入适量的SDS缓冲液，保证蛋白样品充分解离和均一化。

控制电泳电流和电压，以防止电泳电流过大或电压过高，造成凝胶变形或溢出。通常使用较低的电流和电压进行电泳，使凝胶温度不超过室温。

电泳完毕后，立即停止电源并将凝胶取出。注意避免凝胶破裂或变形，应使用平整的夹子将凝胶取出。

如果发现凝胶表面有纹路，可以使用助溶剂进行处理，例如将凝胶浸泡在甲醇、丙酮或二甲基亚砜等溶剂中，使凝胶表面平滑，但这可能会影响蛋白质的转移效率。建议在进行这些操作前，应先在小规模试验中测试助溶剂对蛋白质转移的影响。

最后，在染色前应将凝胶浸泡在去离子水中清洗，去除残留的试剂和缓冲液，以避免染色不均匀。

要使SDS-PAGE蛋白电泳获得干净的胶面和无纹路的凝胶需要注意多个细节，并进行实验的多个环节严格控制，这需要在实验操作中积累经验，并不断改进优化实验流程。