wb：500多kda的大分子怎么跑

确定500kda么，还是只是分子量500kd？SDS-PAGE是变形蛋白电泳，加SDS蛋白会变成线性，实际分离的分子量会发生变化，请再确认一下。如果500多，建议6-10%配胶（自己摸索一下），转膜时建议300mah至少2h

选对凝胶很重要

3种最常见的凝胶包括Tris-Glycine, Bis-Tris and Tris-Acetate. Tris-Glycine凝胶的PH为8.6，且保质期很短。在跑胶的过程中，PH还有上升的趋势，可达到9.5。这会导致蛋白降解和低分辨率。

Bis-Tris凝胶的PH为6.4，相对Tris-Glycine凝胶，稳定性和保质期都有所增加。但这种凝胶需要在溶液中增加抗氧化剂，比如DTT，以维持蛋白的还原性。

Tris-Acetate 凝胶的PH为7，跑大分子蛋白会呈现很高的分辨率。跑大分子蛋白时，我们推荐使用Tris-Acetate 凝胶。

凝胶浓度很重要

既然选择了Tris-Acetate 凝胶，还有几个要考虑的问题。凝胶浓度与孔径成反比：浓度越小，孔越大。较大的蛋白质更容易通过较大的孔，所以我建议使用低百分比的凝胶，如7％。可以使用梯度凝胶或非梯度凝胶，梯度凝胶非常适合新样本。

提高转移buffer中的SDS，减少甲醇

转移buffer的组成至关重要。如果有甲醇存在，大分子蛋白很容易沉淀。通过减少转移buffer中的甲醇百分比（10％或更低）来避免这种情况发生。为了进一步确保蛋白质不会沉淀，考虑添加SDS至终浓度为0.1％。SDS向蛋白添加均匀的负电荷，使得它们更容易从凝胶转移到膜上。

选择合适的膜

膜一般有PVDF膜或NC膜。跑大分子蛋白选择PVDF膜。如前面所说，如果有甲醇存在，大分子蛋白很容易沉淀。而PVDF膜不需要在转移buffer中添加甲醇，目的蛋白转印的机会更高。两种类型的膜都有各种孔径尺寸，最常见的是0.2um和0.45um。与凝胶一样，较大的蛋白比较小的更容易穿过大孔隙。大多数蛋白质（> 20kDa）可以用0.45um膜转移，避免使用0.2um孔径。

增加转印时间

在正确的选择完凝胶、转印膜及转移buffer后，转印正式开始。半干转快且方便，但不适用于大分子蛋白。我建议湿转，因为大分子蛋白转移时间很慢，推荐350-400 mA转移90min或 4°C，40 mA，转印过夜。

我没有跑过500的，但是300多的常跑，300多的，我用8%的胶，还是很好看的，你要不考试试试6%的胶。Western转膜液用常规的就可以，转膜时间，250的，你可以用300mA，2h，但是500的估计你要做个预实验，可能低电流，过夜会好。