细胞介导细胞毒作用检测法1:Cr释放法
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4 小时 51 Cr 释放法检测 CMC 活性
1 )用 51 Cr 铬酸钠标记靶细胞
短期标记法
1. 用 RPMI-1640 培养液洗涤 107 靶细胞,去上清液。用 0.5ml 不含碳酸氢钠的完全培养液悬浮细胞。加入 100 μ Ci ( 3.7MBq ) 51 Cr 铬酸钠, 37 ℃水浴中标记 1 小时,每 5 ~ 10 分钟摇晃一次,混匀细胞。
2. 如上用 RPMI-1640 培养液洗涤细胞 3 次,每次 400 × g 10 分钟。用 50ml RPMI-1640 培养液悬浮细胞,置 37 ℃水浴 30 分钟,以减少非特异的自然释放。
3. 离心 200 × g 10 分钟,去上清液。小心用 RPMI-1640 培养液悬浮细胞,尽量减少振荡引起的细胞损伤以降低靶细胞的自然释放率,将细胞浓度调整为 0.5 × 105 或 1 × 105 /ml 备用。
2 ) 4 小时 51 Cr 释放实验
1. 在 96 孔圆底细胞培养板中加入 51 Cr 标记的靶细胞,每孔加 100 μ l 。
2. 向各孔加 100 μ l 效应细胞,效应细胞与靶细胞的比例(效靶比, E : T )根据要求而定,通常为 5 : 1 ~ 20 : 1 。阴性对照孔(自然释放)不加效应细胞只加 100 μ l 完全培养液,阳性对照孔(最大释放)中加 100 μ l 1 % NP40 (或 2 % SDS , 1mol/L 盐酸)。每个实验置三个复孔。
3. 稍稍离心( 100 × g 3 分钟)后,置 37 ℃ 5 % CO2 的二氧化碳培养箱中培养 4 小时。
4. 离心培养板 200 × g 10 分钟,每孔吸出 100 μ l 上清液置一次性使用的检测管中,在γ-计数仪上(或液闪计数仪上)测定上清液中的每分钟放射性活性( cpm 值)。
3 )特异性杀伤活性的计算
1. 用细胞毒性百分比表示:细胞毒性(%)= [ (实验组 cpm -自然释放组 cpm ) / (最大释放组 cpm -自然释放组 cpm ) ] × 100 %
2. 用溶解单位( lytic unit , LU )表示:一个 LU 是指能溶解一定数量靶细胞的效应细胞数。通常将能溶解 30 %靶细胞的效应细胞数定位一个 LU 。结果以 106 个效应细胞所具有的 LU 数表示: LU30 /106 细胞= 106 /[ ( E : T30 )×(每孔靶细胞数) ] E : T30 是该效靶比时效应细胞能杀伤 30 %靶细胞