凝胶层析法测定蛋白质分子量
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一、实验目的
1.了解凝胶层析的基本原理。
2.掌握利用凝胶层析法测定蛋白质分子量的实验技能。
二、实验原理
凝胶层析(gel chromatography)是20世纪60年代发展起来的一种分离分析方法。其法有许多同义词如凝胶过滤、分子排阻层析、分子筛层析、凝胶渗透层析等。
凝胶层析是利用具有一定孔径大小的多孔凝胶作固定相的层析技术。凝胶的孔隙犹如”筛眼”,当被分离的物质流过凝胶柱时,分子大于凝胶”筛眼”范围的物质完全被排阻,不能进入凝胶颗粒内部,只能随着溶剂在凝胶颗粒之间流动,因此受到的阻滞作用小,流程短,流速块儿先流出层析柱;分子小于”筛眼”的物质则可完全深入凝胶颗粒的”筛眼”中。因此受到的阻滞作用大,而且从一个颗粒的”筛眼”又进入另一个颗粒的”筛眼”,其流程长,流速也就慢,从层析柱中流出就较晚。若分子大小介于上述完全排阻或完全渗入凝胶的物质,则居二者之间从柱中流出。从流出先后次序的不同即可达到分离和纯化被分离物质的目的。
凝胶的这种特性又称为分子筛效应,洗脱时峰的位置和该物质相对分子质量有直接的定量关系。
在一根凝胶柱中,颗粒间自由空间所含溶液的体积称为外水体积V 0 ,不能进入凝胶孔径的那些大分子,当洗脱体积为V0时,出现洗脱峰。
凝胶颗粒内部孔穴的总体积成为内水体积V i ,能全部透入凝胶的那些小分子,当洗脱体积为V 0 +V i 时,出现洗脱峰。
将分子筛分配系数定义为:
K= V e / V i
若生物大分子的分子为球形,其K 与生物大分子的相对分子质量间存在如下关系:
K = -lgM r + c
其中b 和c 为常数。试验已证实这一关系的存在(排阻体积与相对分子质量的关系)。目前常用的凝胶有葡聚糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶、琼脂糖凝胶,其中最常用的是葡聚糖凝胶。葡聚糖凝胶有不同的型号,用于分离不同相对分子质量大小的物质。本实验用葡聚糖SephadexG—75分离胰岛素(M r 为6000)和牛血清白蛋白(M r 为75000)。
三、 仪器 和试剂
仪器
层析柱1cm×90cm、恒流泵、紫外检测仪、部分收集器、记录仪、试管、玻璃棒。
试剂
1. 待分离样品:胰岛素、牛血清白蛋白。
2. 蓝色葡聚糖-2000
3. 葡聚糖Sephadex G—75
4. 洗脱剂
四、 实验步骤
1.凝胶的处理
葡聚糖SephadexG-75干粉经蒸馏水室温充分溶胀24h,或沸 水浴 中3h,这样可大大缩短溶胀时间,而且还可杀死细菌和排除凝胶内部的旗袍。溶胀过程中注意不要过分搅拌,以防颗粒破碎。凝胶颗粒要求大小均匀,可是流速稳定。凝胶充分溶胀后用倾泌法可将不易沉下的较细颗粒除去。将溶胀后的凝胶抽干,用10倍体积的洗脱液处理约1h,搅拌后继续用该法除去悬浮的较细颗粒。
2.装柱
将层析柱垂直装好,关闭出口,加入洗脱液约1cm 高。将处理好的凝胶用等体积的洗脱剂搅成浆状,自柱顶部沿管内壁缓缓加入柱中,待底部凝胶沉积约1cm 高时,再打开出口,继续加入凝胶浆,只凝胶沉积至一定高度(约70cm)即可。装柱要求连续,均匀,无气泡,无”纹路”。
3.平衡
将洗脱剂与恒流泵相连,恒流泵出口端与层析柱入口相连,用2~3倍床体积的洗脱剂平衡,流速为0.5mL/min。平衡好后在凝胶表面放一片滤纸,以防加样时凝胶被冲起。
柱装好和平衡后可用蓝色葡聚糖-2000检查层析行为,在层析柱内加1mL(2mg/mL)蓝色葡聚糖-2000,然后洗脱,流速为0.5mL/min,若色带狭窄并均匀下降,说明装柱良好,然后再用2倍床体积的洗脱剂平衡。
4.加样与洗脱
将柱中多余的液体放出,使液面刚好过凝胶,关闭出口,将1mL 样品沿层析柱管壁小心加入,加完后打开底端出口,使液面降至与凝胶面相平时关闭出口,用少量洗脱剂洗柱内壁2次,加洗脱剂至液层4cm 左右,按上恒流泵,调好流速,开始洗脱。
上样的体积,分析用量一般为床体积的1~2%,制备用量一般为20~30%。
5收集与测定
用部分收集器收集洗脱剂,每管4mL,紫外检测仪280nm 处检测,用记录仪或将检测信号输入色谱工作站系统,绘制洗脱曲线。
6.凝胶柱的处理
一般凝胶用过后,反复用 蒸馏 水通过柱(2~3倍床体积)即可,若凝胶有颜色或比较脏,需用0.5mol/LNaCl 洗涤,再用 蒸馏 水洗。冬季一般放2个月无长霉情况,但在夏季如不用,要加入0.02%的
叠氮钠防腐。
1.了解凝胶层析的基本原理。
2.掌握利用凝胶层析法测定蛋白质分子量的实验技能。
二、实验原理
凝胶层析(gel chromatography)是20世纪60年代发展起来的一种分离分析方法。其法有许多同义词如凝胶过滤、分子排阻层析、分子筛层析、凝胶渗透层析等。
凝胶层析是利用具有一定孔径大小的多孔凝胶作固定相的层析技术。凝胶的孔隙犹如”筛眼”,当被分离的物质流过凝胶柱时,分子大于凝胶”筛眼”范围的物质完全被排阻,不能进入凝胶颗粒内部,只能随着溶剂在凝胶颗粒之间流动,因此受到的阻滞作用小,流程短,流速块儿先流出层析柱;分子小于”筛眼”的物质则可完全深入凝胶颗粒的”筛眼”中。因此受到的阻滞作用大,而且从一个颗粒的”筛眼”又进入另一个颗粒的”筛眼”,其流程长,流速也就慢,从层析柱中流出就较晚。若分子大小介于上述完全排阻或完全渗入凝胶的物质,则居二者之间从柱中流出。从流出先后次序的不同即可达到分离和纯化被分离物质的目的。
凝胶的这种特性又称为分子筛效应,洗脱时峰的位置和该物质相对分子质量有直接的定量关系。
在一根凝胶柱中,颗粒间自由空间所含溶液的体积称为外水体积V 0 ,不能进入凝胶孔径的那些大分子,当洗脱体积为V0时,出现洗脱峰。
凝胶颗粒内部孔穴的总体积成为内水体积V i ,能全部透入凝胶的那些小分子,当洗脱体积为V 0 +V i 时,出现洗脱峰。
将分子筛分配系数定义为:
K= V e / V i
若生物大分子的分子为球形,其K 与生物大分子的相对分子质量间存在如下关系:
K = -lgM r + c
其中b 和c 为常数。试验已证实这一关系的存在(排阻体积与相对分子质量的关系)。目前常用的凝胶有葡聚糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶、琼脂糖凝胶,其中最常用的是葡聚糖凝胶。葡聚糖凝胶有不同的型号,用于分离不同相对分子质量大小的物质。本实验用葡聚糖SephadexG—75分离胰岛素(M r 为6000)和牛血清白蛋白(M r 为75000)。
三、 仪器 和试剂
仪器
层析柱1cm×90cm、恒流泵、紫外检测仪、部分收集器、记录仪、试管、玻璃棒。
试剂
1. 待分离样品:胰岛素、牛血清白蛋白。
2. 蓝色葡聚糖-2000
3. 葡聚糖Sephadex G—75
4. 洗脱剂
四、 实验步骤
1.凝胶的处理
葡聚糖SephadexG-75干粉经蒸馏水室温充分溶胀24h,或沸 水浴 中3h,这样可大大缩短溶胀时间,而且还可杀死细菌和排除凝胶内部的旗袍。溶胀过程中注意不要过分搅拌,以防颗粒破碎。凝胶颗粒要求大小均匀,可是流速稳定。凝胶充分溶胀后用倾泌法可将不易沉下的较细颗粒除去。将溶胀后的凝胶抽干,用10倍体积的洗脱液处理约1h,搅拌后继续用该法除去悬浮的较细颗粒。
2.装柱
将层析柱垂直装好,关闭出口,加入洗脱液约1cm 高。将处理好的凝胶用等体积的洗脱剂搅成浆状,自柱顶部沿管内壁缓缓加入柱中,待底部凝胶沉积约1cm 高时,再打开出口,继续加入凝胶浆,只凝胶沉积至一定高度(约70cm)即可。装柱要求连续,均匀,无气泡,无”纹路”。
3.平衡
将洗脱剂与恒流泵相连,恒流泵出口端与层析柱入口相连,用2~3倍床体积的洗脱剂平衡,流速为0.5mL/min。平衡好后在凝胶表面放一片滤纸,以防加样时凝胶被冲起。
柱装好和平衡后可用蓝色葡聚糖-2000检查层析行为,在层析柱内加1mL(2mg/mL)蓝色葡聚糖-2000,然后洗脱,流速为0.5mL/min,若色带狭窄并均匀下降,说明装柱良好,然后再用2倍床体积的洗脱剂平衡。
4.加样与洗脱
将柱中多余的液体放出,使液面刚好过凝胶,关闭出口,将1mL 样品沿层析柱管壁小心加入,加完后打开底端出口,使液面降至与凝胶面相平时关闭出口,用少量洗脱剂洗柱内壁2次,加洗脱剂至液层4cm 左右,按上恒流泵,调好流速,开始洗脱。
上样的体积,分析用量一般为床体积的1~2%,制备用量一般为20~30%。
5收集与测定
用部分收集器收集洗脱剂,每管4mL,紫外检测仪280nm 处检测,用记录仪或将检测信号输入色谱工作站系统,绘制洗脱曲线。
6.凝胶柱的处理
一般凝胶用过后,反复用 蒸馏 水通过柱(2~3倍床体积)即可,若凝胶有颜色或比较脏,需用0.5mol/LNaCl 洗涤,再用 蒸馏 水洗。冬季一般放2个月无长霉情况,但在夏季如不用,要加入0.02%的
叠氮钠防腐。