检测细胞增殖，你的方法用对了吗？

检测细胞增殖的方法很多，MTT、CCK8、BrdU 等等，你知道细胞可以 CFSE 染色用流式来检测细胞增殖么？好啦，不知道的同学搬好小板凳排排坐啦！

CFSE 是一种荧光染料，脂溶性高，易进入细胞，可以与胞内氨基酸发生不可逆的结合，在细胞的分裂过程中能够进入子代细胞，同时荧光强度也变为母细胞的一半，可用流式或荧光纤维镜对其进行分析。

下面我们就开始动手，用流式来检测脾淋巴细胞的增殖。

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— 先准备一些试剂 —

ConA 储存液：用双蒸水配置终浓度为 1 mg/ml（200×）

CFSE 储存液：用 DMSO 配置终浓度为 5 mM 的 CFSE 溶液（1000×）

RPMI 1640 完全培养基：RPMI 1640 培养基 + 10% 血清 + 1% 双抗

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— 实验正式开始 —

1. 脾淋巴细胞的制备

无菌操作取出小鼠脾脏，研磨成单细胞悬液，用红细胞裂解液或者小鼠淋巴细胞分离液去除红细胞，将细胞过 40 μm 细胞滤网后，进行细胞计数。样本清洗液洗涤（可用 PBS 或者不含血清双抗的培养基代替），1 500 rpm 离心 5 min，用 PBS 重悬，调整细胞浓度为 107/ml。

2. CFSE 标记脾细胞

取部分细胞作为不染色组阴性对照，其他细胞加入 CFSE 溶液，使得终浓度为 5 μm，室温避光孵育 15 min，加入 5 倍体积的完全培养基，室温静置 5 min，释放多余的未结合的 CFSE 来终止其染色。1 500 rpm 离心 5 min，用与 CFSE 染色时相同体积的 RPMI 1640 完全培养基重悬细胞沉淀，使其细胞浓度仍为 107/ml。

3. ConA 与脾细胞孵育

取 96 孔圆底细胞培养板，CFSE 染色组和不染色组分别设置 ConA 组和 PBS 组，将细胞进行铺板，先将 CFSE 染色和不染色的细胞 2 倍稀释，每孔 100 μl 细胞铺板。

将 ConA 储存液进行 100 倍稀释，在 ConA 组中每孔加入 100 μl 配置好的 ConA 工作液，使得终浓度为 5 μg/ml（这时就是 200 倍稀释啦），在 PBS 组中加入 100 μl 完全培养基（这样铺板密度就为 5×105/ 孔）。将细胞培养板置于 37 ℃，5% CO2 的培养箱中培养 72 小时。

4. 流式上机检测

收集各组细胞，染色组细胞进行 CD3 表面染色，以对脾细胞中的淋巴细胞的增殖进行检测。流式 FITC 通道分析增殖的脾细胞所占的比例。

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— 看看我做的结果吧 —

用的 BD C6 流式细胞仪，直接截图啦。首先是不染色组，圈出 P1 门，直方图圈出细胞，基本都是 CFSE 阴性的。

接下来看染色组，因我们分析的是脾淋巴细胞，所以是在 CD3 in P1 门里看 CFSE 阳性，发现几乎所有细胞都被 CFSE 染色。细胞增殖仅为 1%。

在 ConA 刺激组的直方图中，我们可以明显看到与 PBS 组相比，左边多出 3 个小峰，这就是增殖的脾淋巴细胞啦，同样在散点图中也能看到与 PBS 组相比多出三个分群，这就说明细胞在 72 h 里传了三代。

好啦，实验结束，是不是更方便简单明了呢？