简介
对于小的模式动物,如小鼠、大鼠、斑马鱼,由于采集受精卵数目多,可以采用显微注射 TALEN mRNA 方法到动物的受精卵中实现全身基因敲除。对于猴子、树驹等不可大规模获取卵巢、采集卵母细胞的非经济动物,也可采用显微注射 TALEN mRNA 方法敲除基因。大致步骤为先以 TALEN 质粒为模板,体外转录出 mRNA,再显微注射 TALEN mRNA 到受精卵中。
材料与仪器
器材:
①凝胶电泳仪
②水浴锅
③低温离心机
④培养箱、注射器、无菌手术器械
⑤PCR 仪
试剂:
①培养基
②卡那霉素;氯霉素;潮霉素
③限制性内切酶、DNA 连接酶
④琼脂糖凝胶
⑤hCG
步骤
受精卵显微注射 TALEN mRNA 敲除基因的主要操作步骤如下:
1.体外转录 TALEN mRNA
(1)线性化 TALEN 质粒:pCS2-TALEN 载体 polyA 后有 NotI 位点,使用 Not I 酶切 TALEN 质粒,线性化 pCS2-TALEN 载体,然后使用 DNA 纯化柱子(Qiagene,QIAquick PCR Purification Kit,Cat NO.28104)回 收 DNA。
(2)转录 TALEN mRNA:采用体外转录 mRNA 试剂盒进行体外转录 TALEN mRNA [mMESSAGEmMACHINE® SP6 Kit,Invitrogen(Ambion)] 或 [mMESSAGE mMACHINE® T7 Kit,Invitrogen(Ambion)]。转 录详细操作可参见试剂盒说明书。
1)按配方加样,构建体外转录反应体系。37 ℃ 反应 2 小时。反应完成后,可以取 2 μl 跑凝胶电泳检测体外转录 mRNA 的效果,跑胶所用凝胶需要用 RNase-free 试剂配制。
2)反应结束后,使用 LiCI 沉淀回收 TALEN mRNA:在上述反应中加入 15 μl DEPC H2O 和 15 μl 2.5 mol/L LiCl,-20 ℃ 沉淀 30 分钟。4 ℃ 最大转速离心 15 分钟,弃上清;加入 1 mL 70% 乙醇,4 ℃ 最大转速离心 10 分钟;弃上清,注意管底的白色沉淀,最后溶于 20~30 μl DEPC H2O 中,nanodrop 定量。测浓度一般都在 200~500 ng/μl。
3)将左、右两边的 TALEN mRNA 混合,按照推荐的 mRNA 浓度显微注射到动物的受精卵中,初次实验时可按照推荐浓度,做不同浓度梯度进行实验。
2.显微注射 TALEN mRNA 到动物受精卵
(1)受精卵收集和培养:注射 hCG 进行超排,注射 17~19 小时后,脱颈处死受孕的小鼠,取出输卵管,移到含有透明质酸酶的 M2 操作液中。反复吹打出受精卵,将受精卵吸到 M16 培养液中,在 37 ℃ 培养箱内培养(具体的操作见相关章节)。
(2)显微注射:选取发育形态正常的受精卵进行显微注射。胚胎收集 4~6 小时后,注射针吸取 TALENmRNA 开始进行显微注射。注射针进入细胞质开始进行注射,直至细胞略微膨胀为止。注射过的受精卵,须迅速移到 M16 培养液中,并在 37 ℃ 培养箱内放置培养。受精卵分批进行注射,每批注射胚胎的量,根据实验员熟练程度而灵活掌握,需注射一共 100 个以上的受精卵。
(3)胚胎移植:注射后存活的受精卵,在显微操作的第 2 天移植到交配后 12 小时假孕雌鼠的输卵管中。移植可单侧移植,也可双侧移植。每侧移植胚胎 15~20 枚(具体的操作见相关章节)。
注意事项
1.RNA 非常不稳定,极容易被 RNase 降解,下面体外转录 TALEN mRNA 实验步骤请使用 RNase-free 的枪头、Tube。配制溶液请使用 DEPC 处理过的水。
来源:丁香实验