简介
原理
材料与仪器
器材:
① 载玻片
② 盖玻片
③ 计数板
④ 10 mL 吸管
⑤ 吸管橡皮球
⑥ 10 mL 离心管
⑦ 微量移液器吸头
⑧ 滴管
⑨ 滴管橡皮头
⑩ 盖玻片
⑪ Parafilm 膜
⑫ 湿盒
⑬ 微量移液器及其吸头
⑭ 普通显微镜
⑮ HeLa 细胞(或别的细胞)。
试剂:
① 中性树脂凋亡诱导剂(根据情况自定)
② 消化液(0.02% EDTA)
③ PBS、4% 多聚甲醛(0.1 mol/L PBS,pH7.4)
④ 3% H2O2(避光保存)
⑤ 蛋白酶 K
⑥ 孵育液
(100 mmol/L 二甲胂酸钾(pH7.2),2 mmol/L CoCl2,0.2 mmol/L DTT,150 mmol/L NaC1,0.05% BSA)
⑦ 5 x TdT 反应缓冲液
(500 mmol/L 二甲胂酸钾(pH7.2),10 mmol/L CoCl2,1 mmol/L DTT。)
⑧ 末端脱氧核糖核酸转移酶(TdT)(4U/μL)
⑨ Dig-dUTP(40~80 μmol/L)
⑩ 双蒸水
⑪ 10 x DAB-H2O2 显色液
(0.1 mol/L Tris-Cl(pH7.6),0.4% DAB,-20 ℃ 避光保存,用前稀释 10 倍并加入 H2O2。)
⑫ 苏木精染液
步骤
原位末端标记法检测细胞凋亡的基本过程可分为如下几步:
A 样品处理玻片预先用多聚赖氨酸或 APES 进行处理。制备细胞涂片(见基本方案 1):4% 多聚甲醛-0.1 mol/L PBS(pH7.4)室温固定 1 h。
B PBS 洗 3 x 5 min。
C 3% H2O2 室温处理 10 min,封闭内源过氧化物酶活性。PBS 洗 2 x 3 min。
D 蛋白酶K 室温处理 10~60 s,PBS 洗 3 x 3 min。
E 加 30 μL 孵育液,Parafilm 膜覆盖,室温孵育 10 min。取下 Parafilm膜,用纸巾吸去水。
F 4 μL 5 x TdT 反应缓冲液+1 μL TdT+1 μL Dig-dUTP+14 μL 双蒸水,混匀后滴加在标本上,Parafilm 膜覆盖,37 ℃ 孵育 1~2 h。取下Parafilm 膜,PBS 洗 3 x 2 min。
G 加 20~50 μL 5 U/mL 的辣根过氧化物酶偶联的地高辛抗体,Parafilm 膜覆盖,37 ℃ 孵育 30 min。取下 Parafilm 膜,PBS 洗 3 x 2 min。
H 0.04% 的 DAB 显色 5~10 min,镜下控制时间。过量的水清洗。
I 苏木精(或甲基绿)轻度复染 30 s~3 min。过量的水清洗。
注意事项
2 废弃物和废液应单独存放。
来源:丁香实验