原理
LSAB 法或称 S-P 法、SABC 法,它是采用生物素标记的第二抗体与结合有 HRP 或 AKP 酶的链霉亲和素(streptavidin)连接来测定细胞及组织中的抗原。链霉亲和素是一种从链霉菌培养物中提取的蛋白质,相对分子质量 60000,不含糖链,等电点 pI 为 6.0~6.5。链霉亲和素同一定浓度的生物素化酶混合后,就能形成链霉亲和素-酶复合物,这种复合物中至少存在 1 个尚未被生物素占据的亲和素结合位点,可以和各种生物素标记抗体结合。由于采用了改良的亲和纯化技术和酶标技术,LSAB 法敏感性更髙、背景更清晰,其原理见图 5-3。
材料与仪器
蛋白酶 PBS H2O2 树胶 特异性一抗 生物素标记二抗 过氧化物酶 链霉亲和素
步骤
1. 石蜡切片常规脱蜡至水,PBS 洗 3×3 min。
2. IHC 的前处理视特异性一抗不同,可采用蛋白酶消化或热诱导的微波抗原修复(AR),PBS 洗 3×3 min。
3. 3% 过氧化氢孵育 10 min(可省略),以阻断内源性过氧化物酶活性。
4. PBS 洗 3×3 min。
5. 10% 非免疫性动物血清孵育 10 min(可省略),以减少非特异性背景,无需冲洗,只需吸去多余血清。
6. 滴加适当稀释的第一抗体,37℃ 孵育 60 min 或 4℃ 过夜。
7. PBS 洗 3×3 min。
8. 滴加生物素标记的二抗,37℃ 孵育 30~60 min。
9. PBS 洗 3×3 min。
10. 滴加过氧化物酶标记的链霉亲和素,室温孵育 30 min。
11. PBS 洗 3×3 min。
12. 0.04% DAB(含 0.03% H2O2)显色 5~10 min。
13. 复染,脱水,常规树胶封固,结果观察。
常见问题
此方法与 ABC 法相比,不需 A、B 两液提前混合,操作者容易掌握,稳定性高,由于采用了低等电点的链霉亲和素,其内源性生物素干扰要低于 ABC 法。目前该法仍将是诊断和研究的常用方法,有现成的即用型 S-P 试剂盒出售,种类很多,还有针对一抗是羊、鸡、大鼠、小鼠和兔的试剂盒。该法生物素化二抗和链霉亲和素-HRP(AKP)的孵育(室温)时间仅需 10~15 min,其敏感性和所用时间与 EnVision 法一致。其最大的缺点是内源性生物素的干扰。
来源:丁香实验