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单核细胞增生性利斯特氏菌感染动物模型

相关实验:染性疾病动物模型

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

 

本 方 案 用 单 核 细 胞 增 生性 利 斯特 氏 菌 株 感 染 小鼠

材 料

单核细胞增生性利斯特氏菌(单 元 6. 6 和单 元 7. 7)

无菌的脑、心 脏 浸 剂(B H I ) 肉 汤 培 养 基(Difco)

PBS

小 鼠

分光光度计

红外线灯

小鼠操控装置

I m l 吸管

27 G 针头

1.准备单核细胞增生性利斯特氏菌(如 10403s 菌株),用 无 菌 B H I 肉汤培养基 37°C 培养 ,也可用无菌的 B H I 肉 汤 琼 脂 平 板(单 元 7.1),或 胰 蛋 白 胨 磷 酸 盐 肉 汤(单元 6. 6 ) 进行培养。

2 . 测 定 600m n (A 600 ) 的吸光率检测早期对数生长期的细菌生长,用 P B S 把浓度调整到 10 OOO 个细胞/ml。

由于单核细胞增生性利斯特氏菌的生长速率和吸光率的差别,在感染小鼠之前最好进行标准化的处理。用肉汤 37°C 培养单核细胞增生性利斯特氏菌,每 隔 I h 测定A 600处的吸光度,持续测定 6〜8 h 。在每个时间点,培养物用 P B S 稀释,接种在无菌肉汤琼脂平板上培养 24 h ,用平板上的细菌克隆数来验证相关的焱_数值。 43251、10403s 细胞株在 A 600刚处每 0. 1 代表了大约 2 X I O 8 个细胞/m l 细菌。

3 . 红外线灯照射小鼠 5〜lOmin,把小鼠放进一操控装置,用 I m l 注射器和 27 G 针头经小 鼠 尾 静 脉(附 录 2E ) 接 种 0.2m l 稀释的利斯特氏菌液(2000 细菌)。把小鼠放置于 B L -2 实验室进行特异性的免疫反应实验(见 辅 助 方 案 1 ) 或者诱导细菌特异性 T细 胞 系(见辅助方案 2)。

利斯特氏菌感染小鼠 7〜8d 产生特异的丁细胞反应。如果免疫的小鼠是用来研究机体对利斯特氏菌的特异性免疫反应,要 在 感 染 3 周 、最 好 5 周进行实验,以排除非特异性的炎症反应的干扰。

辅 助 方 案 1 小鼠感染利斯特氏菌后的特异性和固有免疫反应评估

附 加 材 料

非 免 疫 小 鼠(可选)

0 •0 5 % (v/V ) TritonX-IOO

无菌的脑、心脏浸剂肉汤琼脂平板

无菌不锈钢滤网

50m m 无菌培养皿

12m m X 75m m 无菌聚苯乙婦管

无菌玻璃涂棒

1 . 准备单核细胞增生性利斯特氏菌(见基本方案步骤 1〜2),调 整 浓 度 到 IO6 个细胞/m l 。每一个实验组注射 3〜5 只小鼠,每只小鼠注射 0.2 ml (2X 105 个细菌,见基本方案步骤 3)。

这个剂量代表了约 l O X B A L B / c L D 5Q,因此只适合用于具有同样免疫力的小鼠。正 常(naive) 小鼠可用来检测用亚致死量的单核细胞增生性利斯特氏菌通过 i.V•感染小鼠后所产生的特异性免疫反应和固有免疫反应,可在感染小鼠 48〜72 h 检测固有免疫反应及在 7〜IOd 检测特异性的免疫反应。

2 . 把感染后的小鼠置于 B L -2 实 验 室 24〜48 h 。每天观察小鼠的得病状态(毛色、精神状态),处死即将死亡的小鼠。

3.把不镑钢滤网分别放到两个各加有 5m l 含 0 •0 5 % Triton X -IOO 的 50m m 无菌培养皿中。感染小鼠 24〜48 h 后 ,脱 颈 处 死 小 鼠(附 录 2 G ) ,取脾脏和肝脏各自放于滤网上 。用 5m l 注射器的橡胶棒挤压脾脏和肝脏,通 过 滤 网 ,使 Triton X -100 和组织
混匀。

4 . 准 备 3 个无菌的 12m m X 75m m 无菌聚苯乙烯管,各 加 入 0.9m l 的 0.05% Triton X -100。第一个管中加入 0.1m l 的组织勻浆液,混匀,再从第一个管中取 0.1m l 混匀液加入第二个管中,混勻。第三个管子添加第二个管子里的 0.1m l 混匀液。

5 . 从每一个稀释的管中取出 IOiUl 放于新鲜 B H I 琼脂平板的中央,用无菌玻璃涂棒涂匀接种。平板置于 37°C 温箱中孵育 2 4 h 。

6 . 统计每一个平板的克隆数,根据所涂布液体的体积和稀释度,计算出每个器官里所含有的细菌总数。

辅 助 方 案 2 利斯特氏菌特异性 T 细胞的制备

附 加 材 料

J7 7 4 巨噬细胞样细胞(A T C C # T I B 67)

无抗生素的完全培养基 10

含 5/xg/m l 庆大霉素的完全培养基 10 (其他的抗生素代替)

单核细胞增生性利斯特氏菌感染的小鼠(见基本方案)

填充用的脾细胞

大鼠刀豆凝聚素 A (C o n A ) 活 化 上 清(单 元 2. 12)
lmol/L or甲基甘露糖苷 正 常 (未感染)同系B A L B /c 小鼠 1: 11111〇 1/1^合成肽溶液(可选;见表11.4.3) I O c m 组 织 培 养 板 (如 Falcon) 25c m 2组 织 培 养 瓶 (如 Falcon) 7 射线 0.22Mm 注 射 器 式 滤 器 (可选) 1. J774细胞在不含抗生素的R P M I -10的 I O c m 组织培养板中培养至少ld,收集细胞, 用移液管吸取冷的P B S 轻轻地吹打细胞后,取部分用台盼蓝染色进行细胞计数(附 录 3C )0 如果细胞生长良好,长成片,预计的细胞得率应该为大约2 X 107个细胞/平板。 2 . 在 25cm2组织培养瓶中加入IOml不含抗生素的R P M I -1 0 和 5 X 106个 J7 7 4 细胞。直 立放置, 37°C , 5 % C O 2孵育过夜。 3 . 将单核细胞增生性利斯特氏菌加入无菌B H I 培养基中, 37°C 摇 菌 ,直 到 A _ 数值为 0.1 (大 约 2 X IO8个细胞/ml)。 4 . 加 入 I m l 上述利斯特氏菌液,感 染 J7 7 4 细胞 , 37°C孵 育 30m i n 后弃原来的培养基, 加 入 IOml含 有 5Mg / m l 庆 大 霉 素 的 R P M I -10, 37°C孵 育 3h 。弃原培 养 基 ,再加入 IOml新鲜的含5pg/ml庆大霉素的R P M I -10,孵育过夜。用 20 OOOrad射线照射组织 培养瓶中感染的J774细胞。 5 . 最初的反应峰值出现,即 7〜8d,分离利斯特氏菌感染的B A L B /c 小 鼠 脾 脏 (单 元 2.1)。 6. 25°C , 500g 离 心 细 胞 5min,用 A C K 溶 解 红 细 胞 (单 元 2.1)。再次离心沉淀脾细 胞 ,然后用含有5Mg/ml庆大霉素的R P M I -10重悬细胞,用血细胞计数器进行计数 (附录3A )。 6〜8 周龄的B A L B /c 小鼠感染单核细胞增生性利斯特氏菌7d 后 ,其脾细胞数应 该达到2 X 108〜2. 5X 108个细胞。 7 . 在含射线灭活的利斯特氏菌感染J774细胞的培养瓶中加入5 X IO7〜6 X IO7免疫脾细 胞 ,用 5Mg/ml庆大霉素的R P M I -10调整终体积至20m l 。 8 . 上述免疫细胞体外每周用感染的J7 7 4 细 胞 和 3 X 106射 线 (2000rad) 灭活的初始 (naive) 脾细胞作为填充细胞(初始脾细胞,步 骤 5 和 6 ) 重复刺激,第三次后所有 后继刺激物需加入大鼠脾细胞C o n A 活化的条件 培 养 上 清 (含 C T L 克隆生长所需的 IL- 2 ) 和 50m m o l /Lcx-甲基甘露糖苷。 体外重新刺激后的T 细胞可在4〜6d 用 于 C T L 检测。 C o n A 活化上清液的最佳 浓度需经过实验来确定,但是我们经常所用的终浓度是1 0 % (W V )。 9 . 用有限稀释法在9 6 孔培养板中筛选获得T 细 胞 克 隆 和 亚 克 隆 (单 元 2. 12),接下来 用上述相同的步骤,按比例加入填充细胞,每孔所添加的总体积是200W 。 10. 制 备 B A L B /c 小鼠的初始脾细胞(步 骤 5 和 6),用 2000m d 射线照射。 可选择用肽重复刺激(步 骤 10〜15),荷载肽的初始脾细胞作为每周刺激的刺 激细胞。 11. 溶 化 l m m 〇l/L 的合成肽溶液,并 稀 释 到 2m l 的 R P M I -10 (含或不含庆大霉素)至
K T 6〜10—9m ol/L (表 11. 4. 3 ) , 0.22pm 过滤除菌。 12.取 30X 106〜40X 106个照射灭活的初始脾细胞经25°C , 500g 离 心 细 胞 5m i n 得到细 胞沉淀,用肽溶液重悬细胞至20X 106个细胞/m l , 37°C 孵 育 lh。 13•用IO m l含有庆大霉素的RPM I-1 0 洗涤刺激细胞两遍后,用 5m l含庆大霉素的 RPMI- 1 0重悬细胞,并移至直立的25cm2组织培养瓶中。 14.加 5 X 107〜6 X 107个用利斯特氏菌免疫的小鼠(初 次 感 染 7d 后)脾 细 胞 ,向含荷 载合成肽的刺激细胞的组织培养瓶中加入5m l 含 庆 大 霉 素 的 R P M I -10重悬细胞, 置 37°C 孵育。采用有限稀释法建立T 细 胞 克 隆 (步 骤 9)。

来源:丁香实验

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