原理
利用肿瘤细胞无限繁殖的特点,掌握其体外生长动态,取处于对数生长期的细胞便可获得丰富的分裂相。肿瘤细胞染色体异常包括两个方面:1. 结构异常 即在肿瘤细胞常出现的染色体畸变,包括双着丝点染色体、环状染色体、断裂的染色体、染色体裂隙及微小体等。2. 数目异常 由于肿瘤细胞分裂失去应有的调控,可出现亚二倍体、超二倍体和多一倍体数目异常现象。肿瘤细胞染色体制备技术在细胞生物学、医学遗传学的基础研究和临床诊断、愈后观察等方面均有广泛用途。
材料与仪器
HL—60细胞 HeLa细胞
640培养液 肝素溶液 秋水仙素 胰蛋白酶 EDTA PHA KCl 甲醇 冰醋酸 Giemsa原液 磷酸缓冲液 生理盐水
超净台 镊子 离心机 水浴箱 天平 离心管 显微镜 载玻片 平皿
640培养液 肝素溶液 秋水仙素 胰蛋白酶 EDTA PHA KCl 甲醇 冰醋酸 Giemsa原液 磷酸缓冲液 生理盐水
超净台 镊子 离心机 水浴箱 天平 离心管 显微镜 载玻片 平皿
步骤
1. 以1.6x 105个/ml 细胞浓度将FL-60细胞接种于培养瓶内。
2. 48小时后以终浓度为0.04ug/ml 的秋水仙素处理2.5小时,移入10 ml 离心管。
3. 其余步骤与淋巴细胞染色体制备相同。
2. 48小时后以终浓度为0.04ug/ml 的秋水仙素处理2.5小时,移入10 ml 离心管。
3. 其余步骤与淋巴细胞染色体制备相同。
4. 将长成单层的HeLa细胞按1:2传代进行培养,36小时后用终浓度为0.04 ug/ml 的秋水仙素处理3小时。
5. 按时终止培养,用0.25%胰蛋白酶-0.02%EDTA混合消化液处理单层细胞,待细胞收缩变圆时,弃去消化液。
6. 加入少许低渗液将细胞从瓶壁洗脱,移入10 ml 离心管,加入预热37℃的低渗液至5~6 ml,在37℃处理25分钟。
7. 以下步骤同淋巴细胞染色体核型制备。
8. 结果:计数HeLa细胞和HL-60细胞的染色体数并寻找是否有畸变的染色体。
来源:丁香实验