丁香实验_LOGO
登录
提问
我要登录
|免费注册
点赞
收藏
wx-share
分享

PVDF Eli-spot法

相关实验:酶联免疫斑点实验 (ELIspot)

最新修订时间:

原理

细胞受到刺激后局部产生细胞因子,此细胞因子被特异单克隆抗体捕获。细胞分解后, 被捕获的细胞因子与生物素标记的二抗结合,其后再与碱性磷酸酶标记的亲和素结合。BCIP/NBT底物孵育后,PVDF孔板出现"紫色"的斑点表明细胞产生了细胞因子,通过ELISPOT酶联斑点分析系统对斑点的分析后得出结果。
 

材料与仪器

细胞培养液 酒精
CO2孵育箱 PVDF96孔板

步骤

一、试剂盒内容
 
PVDF96孔板,室温保存;0.1 ml捕获抗体,4℃保存;0.1 ml生物素标记检测抗体,4℃保存;15 ul亲和素碱性磷酸酶标,4℃保存;0.25 g牛血清白蛋白,4℃保存;0.25 g脱脂乳,4℃保存;11 ml底物缓冲液,4℃保存;11 ml浓缩PBS(10X),室温保存;11 ml浓缩洗涤液(200x),室温保存。

二、试剂的准备

1. 10 ml磷酸缓冲盐(PBS,10X)以90 ml蒸馏水稀释;

2. 0.22 g脱脂乳用11 ml稀释的PBS溶解,最终浓度为2%;

3. 0.22 g BSA溶解于22 ml已稀释的PBS,最终浓度为1%;

4. 10 ml浓缩洗涤液(200x)以1990 ml蒸馏水稀释;

5. 10 ul亲和素碱性磷酸酶以10 ml PBS-1%,BSA稀释;

6. 7 ml酒精以3 ml蒸馏水稀释,最终浓度为70%。
 
三、Eli-spot操作过程
 
1.  用100 ul 70%酒精孵育PVDF孔板,室温下孵育10分钟。
 
2.  倒去酒精,用100 ul PBS洗涤3次。
 
3. 将100 ul捕获抗体加入10 ml PBS中,混合, 每孔加100 ul, 盖上板盖,4℃过夜。
 
4.  倒去液体,100 ul PBS洗涤一次。
 
5.  每孔加入100 ul 2%脱脂乳PBS(见试剂准备),盖上板盖,室温下孵育2小时。
 
6.  在水槽边和吸水纸上轻打,倒去液体。
 
7.用100ul PBS洗涤一次。
 
8.  每孔加入100 ul细胞悬浮液(含适当量的细胞和相应浓度的刺激剂)。细胞可预先在体外接受刺激(间接Eli-spot)。盖上标准的96孔板塑料板盖,37℃ CO2孵育箱中孵育一定的时间(15-20小时)。这期间不要晃动或移动孔板。
 
9.  在水槽边和吸水纸上轻打,倒去液体。
 
10.  每孔加100 ul洗涤缓冲液,4℃孵育10分钟。
 
11.  用100 ul洗涤缓冲液洗孔3次。
 
12.  于10 ml PBS-1%BSA中稀释100 ul检测抗体,此为一板的量。每孔加100 ul此液体,盖上板盖,37℃下孵育1小时30分。
 
13.  倒去液体,用100 ul洗涤缓冲液洗3次。
 
14.  每板以10 ml PBS-1%BSA稀释10 ul的亲和素碱性磷酸酶。每孔加入100 ul此液体,盖上板盖,37℃孵育1小时。
 
15.  倒去液体,用100 ul洗涤缓冲液洗3次。在吸水纸上拍打,吸干残留的洗涤液。
 
16.  每孔加入100 ul BCIP/NBT。
 
17.  室温下反应5-15分钟。完全显色后,将此液倒于相应的盘中。
 
18.  用蒸馏水充分洗涤膜的两边。吸水纸上轻拍,使膜干燥。保存时,将板倒置以免残留的液体流回膜上一旦膜干燥后,读取点数。4℃下放置一夜,点会比较明显。
 
此板在室温下避光保存。使用时应注意BCIP/NBT缓冲液是潜在的致癌物质,试验时带手套,使用后适当处理。对MAIPAN4510板,孵育时由于毛细作用,试剂渗入膜中,此液体难以洗去,因此导致背景增加。为了避免此情况,建议在步骤12时将板底移去,将膜倒转,用蒸馏水流冲洗,同时用洗涤缓冲液按正常的步骤洗涤。在步骤14中,由于板底已移去,建议将MAIP4510板放于空的96孔板上,其后的步骤不变。

常见问题

一、酶联免疫斑点技术(ELISPOT)简介
随着酶联免疫分析技术在医学及生物学领域的广泛应用,使体外检测各种细胞因子及抗体研究有了新的突破。在研究免疫应答机制时以往常用用酶联免疫吸附法(ELISA)检测体液中游离的细胞因子(CK)或抗体,但由于游离的循环抗体或CK的半哀期不同,使之在体液中不断的被代谢或与靶器官结合,而不能确切的反映体内的抗体及CK的水平。80年代,国外的科研工作者根据ELISA技术的基本原理,建立了体外检测特异性抗体分泌细胞和CK分泌细胞的固相酶联免疫斑点技术(ELISPOT)。因其具有较高的特异性和敏感性,目前正被国内外广泛应用,对探索自身免疫系统疾病发病机制具有重要意义。
 
ELISPOT法源自ELISA,又突破传统ELISA法,是定量ELISA技术的延伸和新的发展。两者都是检测细胞产生的细胞因子或其他可溶性蛋白,它们最大的不同在于:
1.  ELISA通过显色反应,在酶标仪上测定吸光度,与标准曲线比较得出可溶性蛋白总量。
2.  ELISPOT通过显色反应,在细胞分泌这种可溶性蛋白的相应位置上显现清晰可辨的斑点,可直接在显微镜下人工计数斑点或通过ELISPOT分析系统对斑点进行计数,1个斑点代表1个细胞,从而计算出分泌该蛋白的细胞的频率。(某些研究不仅要测细胞因子生成量,还需检测分泌此细胞因子的细胞频率)
3.  由于是单细胞水平检测,ELISPOT比ELISA和有限稀释法等更灵敏,能从 20万-30万 细胞中检出 1个 分泌该蛋白的细胞。
4.  捕获抗体为BD、R&D、Mabtach生产的高亲和力、高特异性、低内毒素单抗,在研究者以刺激剂激活细胞时,不会影响活化细胞分泌细胞因子。

二、直接的和间接的Eli-spot法

可在已包被抗体的孔中直接刺激细胞(直接法),或在24孔板或烧瓶中先刺激细胞,然后放入已包被的孔中(间接法)。使用哪种方法基于:1)检测细胞的类型;2)希望得到的细胞量。如果只需少量的细胞因子生成细胞,使用直接法;如果细胞因子生成细胞较多,最好使用间接法。其它步骤一致。
 
刺激方法:建议用PMA和娄诺霉素刺激PBMC,使其产生IFNγ。在培养液中稀释PBMC(如:RPMI 1640加2 mM谷氨酸盐和10%加热失活的小牛血清),其中含1 ng/ml PMA和500 ng/ml娄诺霉素(Sigma, Saint Louis, MO)。加2×104至5×104个细胞到抗体包被的PVDF孔,孵育箱中孵育10-15小时。其它的刺激剂孵育时间可能不同,基于细胞因子生成细胞的量,按不同情况作最佳选择。
 
 

来源:丁香实验

提问
扫一扫
丁香实验小程序二维码
实验小助手
丁香实验公众号二维码
扫码领资料
反馈
TOP
打开小程序