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简介
传代细胞培养实验,主要用于传代细胞生长繁殖。根据不同细胞采取不同的方法:贴壁生长的细胞用消化法传代,部分贴壁生长的细胞用直接吹打可传代,悬浮生长的细胞可以采用直接吹打或离心分离后传代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打传代。
来源:丁香实验
操作方法
一、贴壁细胞:HeLa细胞的传代培养1. 选取生长密度80%左右的HeLa细胞,在生物安全柜中操作,吸去培养皿中的旧培养基,加入2 mL的D-Hanks溶液,漂洗细胞以除去残留的血清。2. 吸去培养皿中的D-Hanks溶液,加入2 mL 0.25%胰蛋白酶消化液,于37℃消化2~3 min(如消化程度不够,可延长时间),倒置显微镜下观察细胞,当大部分细胞变圆时,轻轻吸去酶消化液(如果有较多细胞漂起
肾小管上皮细胞传代培养人肾小管上皮细胞 HK-2 属源于正常肾的近曲小管细胞,通过导入 HPV-16 E6/E7 基因而获得永生化。
细胞系培养与传代(HK-2 为例)人肾小管上皮细胞 HK-2 属源于正常肾的近曲小管细胞,通过导入 HPV-16 E6/E7 基因而获得永生化。
T 细胞培养操作流程(在 24 孔 G-rex 容器中扩增 T 细胞的方案)第 0 天:T 细胞培养和活化 使用前将足够体积的 PRIME-XV T Cell CDM 预热至 37˚C 至少 15 分钟。注:为避免温度循环,请在预热前确定所需的总体积。 将冻存管在 37˚C 水浴中轻轻搅拌解冻 1 分钟。或者使用新分离或收获的细胞。 小心地将冻存管中的细胞全部转移到装有 10 mL PRIME-XV T Cell CDM 的 15 mL 锥形管中。 将细胞以 300 g
NK 细胞培养操作流程(PBMC 来源的 NK 细胞的扩增方案)活化和扩增培养基的制备1. 通过添加以下推荐浓度的细胞因子:500 IU/mL 的重组人 IL-2 (rhIL-2)、10 ng/mL 的 rhIL-12、10 ng/mL 的 rhIL-18 和 10 ng/mL 的 rhIL-21,为每 1x106 个富集的 NK 细胞制备 1 mL 的接种培养基(PRIME-XV NK Cell CDM)。2. 通过将步骤 1 中细胞因子的相对浓度翻倍,为每
间充质干细胞(MSC)细胞培养操作流程(在 2D 培养容器中扩增 MSC 的方案)以下方案经过优化,可用于在 2D 培养容器中扩增来自脂肪、骨髓和脐带的人类间充质干细胞(hMSCs)。 包被程序 注意:要在 PRIME-XV MSC Expansion XSFM 中培养 MSCs,组织培养板或培养瓶必须预先涂上细胞附着基质。强烈建议使用 Cellnest(FISI,货号1063967)涂覆培养表面以保持一致性。也可使用其他类型的基质(PRIME-XV 人类纤连蛋白,FISI
树突状细胞(DC)细胞培养操作流程完全培养基的制备 本文概述两步法,在 8 天内进行 3 次补料。第 0 天和第 3 天的前两次补料需要使用分化培养基,而第 6 天的第三次补料需要使用完全培养基,其细节概述如下。注意:请在每次补料的当天制作新鲜的相应培养基。 制备分化培养基时,在锥形管中加入适量的 PRIME-XV Dendritic Cell Maturation CDM,并补充 GM-CSF(400 IU/ml)和 IL-