dxy_iko3fra0
我们用了0 500 1000 3000ng/ml的LPS诱导细胞,但是结果不稳定,复盘了我们的各种操作,都是比较合格的,溶解甲赞之前倒掉无血清培养液,我们一开始用吸的,后来扣在卫生纸上,变化还是不大。最终的结果感觉LPS并没有诱导细胞活力产生多大的变化。
其次我们的LPS,我们取了1mg的粉末溶解在1ml无血清培养液中,放在EP管里了,然后再进行稀释。不知道各位的LPS是怎么配的,10mg粉末全部溶解在容器里吗还是跟我们一样,影响大不大
loveliufudan
BV2小胶质细胞MTT法是用来测量细胞活力的常用方法之一。关于您的实验结果不稳定的问题,可能有以下几个可能原因:
LPS的浓度不够准确或者不稳定:LPS是一种脂多糖,其浓度的准确性和稳定性对于细胞活力的诱导至关重要。您可以尝试使用精密天平称量LPS粉末来确保准确的浓度,并将其储存在低温下避免降解。
溶解LPS的方法不适当:LPS的溶解需要在无菌条件下进行,并且可能需要使用一些特殊的技巧来确保完全溶解。您可以尝试使用超声波或者温水浴来促进LPS的溶解,并在溶解后过滤以去除可能的杂质。
细胞培养条件不适当:细胞培养的温度、湿度和CO2浓度等因素会影响细胞的生长和代谢活性。您可以尝试调整这些条件来获得更加稳定的实验结果。
z流沙z
溶解问题不大,建议逐步进行稀释,减小误差,不要一下子稀释太大倍数。另外母液储存在-20,工作液可以暂时放4°使用,而且lps容易吸附到管壁上,因此在吸取和使用前应当充分震荡混匀。
土井挞克树
你的lps配制方式是可以的,可以少量多次加入lps,增加lps的诱导浓度和时间
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