悬浮细胞提取蛋白质加多少裂解液？

看你的细胞量，一般密度的加0.5ml左右的裂解液

样本与组织比例=1：3~3.5 w/v，一般为150~170mg：500μl。

一般加入裂解液0.2-0.3ml或47－141ul/50ml培养瓶。

在进行悬浮细胞的蛋白质提取时，裂解液的加入量应该根据细胞数量和裂解液浓度来确定。一般而言，推荐使用的裂解液浓度是至少10倍于细胞体积的浓度，通常用1毫升的裂解液去裂解1 x 10^7 个细胞。

具体来说，可以按照以下步骤操作：

收集所需数量的悬浮细胞，并用PBS或其他缓冲液洗涤细胞一次，去除细胞培养基等残留物。

将细胞沉淀后加入足够的裂解液，建议使用含有离子型或非离子型洗涤剂的裂解液，可以增加蛋白质的提取效率和纯度。

振荡或旋转等方式将细胞充分裂解，可以考虑使用震荡器或超声波细胞破碎器等设备。

将裂解后的混合液离心，去除残留细胞碎片等杂质，收集上清液中的蛋白质。

需要注意的是，具体加入裂解液的量还取决于实验要求和细胞类型等因素。为了获得最佳的蛋白质提取效果，可以在实验前进行优化，测试不同的裂解液浓度和裂解时间，并选择最佳的实验条件。