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直接间接法
刺激方法:建议用PMA和娄诺霉素刺激PBMC,使其产生IFNγ。
在培养液中稀释PBMC,其中含1ng/ml PMA和500ng/ml娄诺霉素(Sigma, Saint Louis, MO)。加5X104至3x105个细胞到抗体包被的PVDF孔,孵育箱中孵育10-15小时。其它的刺激剂孵育时间可能不同,基于细胞因子生成细胞的量,按不同情况作最佳选择。
操作过程
1. 用50ul 70%酒精孵育PVDF孔板,室温下孵育1分钟。
2. 倒去酒精,用100ul PBS洗涤3次。
3.将100ul捕获抗体加入10ml PBS中,混合, 每孔加100ul, 盖上板盖,4℃过夜。
4.倒去液体,100ul PBS洗涤一次。
5.每孔加入100ul 2%脱脂乳PBS(见试剂准备),盖上板盖,室温下孵育2小时。
6.在水槽边和吸水纸上轻打,倒去液体。
7.用100ul PBS洗涤一次。
8.每孔加入100ul细胞悬浮液(含适当量的细胞和相应浓度的刺激剂)。细胞可预先在体外接受刺激(间接Eli-spot)。盖上标准的96孔板塑料板盖,37℃ CO2孵育箱中孵育一定的时间(15-20小时)。这期间不要晃动或移动孔板。
9.在水槽边和吸水纸上轻打,倒去液体。
10.每孔加100ul洗涤缓冲液,4℃孵育10分钟。
11.用100ul洗涤缓冲液洗孔3次。
12.于10ml PBS-1%BSA中稀释100ul检测抗体,此为一板的量。每孔加100ul此液体,盖上板盖,室温下孵育2小时 。
13.倒去液体,用100ul洗涤缓冲液洗3次。
14.每板以10ml PBS-1%BSA稀释10ul的亲和素碱性磷酸酶。每孔加入100ul此液体,盖上板盖,室温下孵育1小时。
15.倒去液体,用100ul洗涤缓冲液洗3次。在吸水纸上拍打,吸干残留的洗涤液。
16.每孔加入100ul BCIP/NBT。
17.室温下反应5-15分钟。完全显色后,将此液倒于相应的盘中。
18.用蒸馏水充分洗涤膜的两边。吸水纸上轻拍,使膜干燥。保存时,将板倒置以免残留的液体流回膜上一旦膜干燥后,读取点数。4℃下放置一夜,点会比较明显。此板在室温下避光保存。
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ELISpot实验步骤与原理示意
大致原理上分为如下7个步骤
Step.1 包被:将单克隆捕获抗体添加到乙醇处理的PVDF膜板上
Step.2 细胞孵育:在有刺激的情况下加入细胞,孵育,细胞分泌细胞因子
Step.3 捕获分泌物:激活后的细胞,分泌的细胞因子被周围的抗体结合捕获
Step.4 检测抗体:去除细胞,清洗平板,加入生物素化的检测抗体
Step.5 链霉亲和素-酶偶联物:加入链霉亲和素偶联物,保证后续在膜上形成斑点
Step.6 加反应底物:当酶催化时,显色底物形成不溶性沉淀
Step.7 结果分析:在自动点阅读器中对结果进行分析。每个斑点对应一个分析物分泌细胞
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以下是一般的Elispot实验步骤:
准备试剂和细胞:根据实验需要准备所需的细胞、培养基、ELISPOT板、抗体、荧光素底物等试剂。
处理细胞:将需要检测的细胞进行处理,如给予刺激、培养等,以促进细胞对特定蛋白质的产生。
将处理后的细胞均匀地分布于ELISPOT板上。
加入特定蛋白质的抗体并孵育,使其与产生的蛋白质结合。
洗涤ELISPOT板以去除未结合的抗体和细胞。
加入二级抗体,与细胞分泌的蛋白质结合。
加入荧光素底物,使产生的信号可视化。
使用显微镜或Elispot分析软件对板上的斑点进行计数和分析。
在进行Elispot实验时,需要注意以下事项:
选择合适的实验条件:包括刺激物、细胞浓度、孵育时间等因素。
保证实验板的清洁:在实验前、实验中和实验后都需要对板进行清洁,避免干扰实验结果。
控制实验的质量:实验需要进行严格的质量控制,包括阳性和阴性对照,以保证实验结果的准确性。
数据分析:需要使用合适的数据分析方法对实验结果进行统计分析和解释。
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