双向电泳的实验相关试剂配制
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1. Bradford 工作液
95%乙醇 25ml 先用乙醇溶解考马斯亮兰G250,溶解完后再加磷
85%磷酸 52ml 酸,最后超纯水定容至500ml。过滤后置于棕色瓶
考马斯亮兰G250 0.035g 外加油皮纸保存(Bradford不稳定,一周内有效)
2. 裂解液
尿素 8M
硫脲 2M
CHAPS 4%
DTT 60 mM
Tris―base 40 mM(如果有条件可以添加PMSF 0.5mM和5%的Pharmalate)
3. 水化液储液
尿素 8M
硫脲 2M
CHAPS 4%
Tris―base 40 mM
4. 分离胶buffer (pH8.8) 250ml
SDS 0.4% 1g
Tris―HCl 1.5M 45.4275g
5. 浓缩胶buffer (pH6.8) 100ml
SDS 0.4% 0.4g
Tris―HCl 0.5M 6.07g
6. 凝胶储存液(30%的丙烯酰胺) 250ml
Acr 29.2% 73g
Bis 0.8% 2g
7. 电极缓冲液(跑一次要配制2500ml)
甘氨酸 43.2g 36g
Tris 9g 或 7.5g
SDS 3g 2.5g
超纯水定容至3000ml 超纯水定容至2500ml
8. 0.5M Tris ―HCl pH 6.8储液
6.1g Tris先用30ml超纯水溶解,再用46ml,3M HCl调pH6.8,再加水定容至100ml
9. 平衡液储液
脲(即尿素) 36g
甘油 30% 30ml
SDS 1% 1g
0.5M Tris―HCl pH6.8 10ml 超纯水定容至100ml
10. 平衡液A(一根胶条)
DTT 20mg
平衡液储液 10ml
11.平衡液B(一根胶条)
碘乙酰氨 300mg
平衡液储液 10ml
0.05%溴酚兰 15ul (平衡液A、B均需临时配制)
12.0.5%琼脂糖10ml
琼脂糖 0.05g
电极缓冲液 10ml
溴酚兰 25ul
补:4、5、6的溶液需过滤后储存于4OC备用。
C. 药品
CHAPS 兼性离子去垢剂 去垢剂可破坏蛋白质分子之间的疏水相互作用,
SDS 离子型去垢剂 提高蛋白质的溶解性,防止在等电聚焦时析出
尿素 离液剂 可改变或破坏氢键等次级键的结构,使蛋白质
硫脲 离液剂 变性并使蛋白失活。尿素和硫脲联合使用,可
以大大增加蛋白质的溶解性
DTT 还原剂 断裂蛋白质分子中Cys残基之间形成的二硫键,增加蛋白质的溶解性。但过分提高DTT的浓度,由于它pKa在8左右,因而会影响pH梯度。DTT在碱性pH下会去质子化,等电聚焦时会损耗,导致二硫键复原,蛋白质沉淀
BSA Bradford中制作标准曲线用
无水乙醇 和磷酸一起,提供Bradford中的环境
磷酸 提供Bradford中的酸性环境
Tris 构成缓冲液的成分,可用于抗衡pH的变化
IPG buffer
覆盖液 即矿物油,防止水分蒸发,样品干燥。
丙烯酰胺(Acr) 以丙烯酰胺为单体,甲叉二丙烯酰胺为交联剂,
甲叉二丙烯酰胺 (Bis) 在催化剂(Aps)和引发剂(TEMED)作用下,聚合交联成三维网状结构
琼脂糖
溴酚兰 指示剂作用
碘乙酰氨(IAA) 平衡液B中使用,中和A液中的DTT
正丁醇 比聚丙烯酰胺密度小,用于凝胶制作过程中的压胶
甘油 无机盐的良好溶剂,热稳定性好
Marker
考马斯亮兰G250(Bradford法用) 考马斯亮兰G250有红、蓝两种不同颜色的形式在一定浓度的乙醇及酸性条件下,可配成淡红色的溶液,当与蛋白结合后,产生蓝色化合物,反应迅速而稳定,反应化合物在465~595nm处有最大的光吸收值,化合物颜色 深浅与蛋白浓度的高低成正比关系,因此可检测595nm的光吸收值的大小计算蛋白的含量
甘氨酸 与Tris构成缓冲系统
AgNO3
EDTA 金属螯合剂,可以结合银离子,终止银染过程