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HRP标记抗体的方法

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   酶与抗体交联的方法有许多种 , 根据酶的结构不同可采用不同的方法。对于制备 HRP 结合物,可用戊二醛二步法和过碘酸钠法。尤以简易过碘酸钠法更为常用。

 


  戊二醛二步法
   1.  原理:戊二醛为一种双功能试剂,通过其醛基分别与酶和免疫球蛋白上的氨基共价结合,形成酶 - 戊二醛 - 免疫球蛋白结合物。

   2.  标记步骤:

   (1)  称取 HRP25mg 溶于 1.25 %戊二醛溶液中,于室温静置过夜。

   (2)  反应后的酶溶液经 Sephadex G-25 层析柱,用生理盐水洗脱。流速控制在 1ml 1 分钟,收集棕色流出液。如体积大于 5ml ,则以 PEG 浓缩至 5ml 。放置 25ml 小烧杯中,缓慢搅拌。

   (3)  将待标记的抗体 12.5mg 用生理盐水稀释至 5ml ,搅拌下逐滴加入酶溶液中。

   (4)  用 1M PH9.5 碳酸缓冲液 0.25ml ,继续搅拌 3? 小时。

   (5)  加 0.2M 赖氨酸 0.25ml ,混匀后,置室温 2 小时。

   (6)  在搅拌下逐滴加入等体积饱和硫酸铵,置 4 1 小时。

   (7)   3000rpm 离心半小时,弃上清。沉淀物用半饱和硫酸铵洗二次,最后沉淀物溶于少量 0.15M PH7.4 PBS 中。

   (8)  将上述溶液装入透析袋中,对 0.15M PH7.4 PB 缓冲盐水透析,去除铵离子后 ( 用萘氏试剂检测 ) 10,000rpm 离心 30 分钟去除沉淀,上清液即为酶结合物,分装后,冰冻保存。

   3.  结果判定:

   (1)  定性及效价滴定:用特异性抗原 ( 或抗体 ) 同酶标记抗体 ( 或抗免疫球蛋白抗体 ) 作双向琼脂扩散试验或免疫电泳试验。然后用酶的底物使沉淀弧显色,可初步鉴定其活性。最后以直接 ELISA ( 或在正式实验系统里 ) 对酶结合物进行滴定 ( 见本节 ( ) 工作浓度的选择 )

   (2)  定量和克分子比值测定:可用分光光度计测定 ( 光程 1cm)

  酶量 (mg ml) OD403nm × 0.4

   IgG (mg ml) OD280nm-OD403nm × 0.42) × 0.94 ×
0.62

         酶量 (mg ml)    IgG (mg ml)   酶量

  克分子比值=──────── ÷ ─────── ─── × 4
           40,000        160,000     IgG


    (3)  本法标记步骤比较简单,重复性好。缺点是酶的利用率低,一般只有 2 4 %的酶与蛋白质结合。

   4.  试剂及器材:

   (1)   0.1M PH6.8 磷酸缓冲盐水 (PBS) :取 0.2M Na2HPO4 49ml, 0.2M NaH2PO4 51ml NaCl1.8 克,加蒸馏水至 200ml

   (2)   1.25 %戊二醛液:取 25 %戊二醛 50ml PH6.8 PBS1ml 混合。

   (3)   1M PH9.5 碳酸盐缓冲液:取 1M 碳酸钠 3ml 1M 碳酸氢钠 7ml 混合。

   (4)   0.2M 赖氨酸溶液:称赖氨酸 29.2mg 溶于 0.01M PH9.5 碳酸缓冲液 1ml 中。

   (5)   0.15M PH7.4 PBS 及生理盐水。

   (6)   PH7.8 饱和硫酸铵溶液及半饱和硫酸铵溶液。

   (7)  萘氏试剂及聚乙二醇 (PEG MW2000)

   (8)  纯化的特异性抗体或抗 Ig 抗体。

   (9)   HRP(RZ>3.0)

   (10) Sephadex G-25 层析柱 (2cm × 50cm)

   (11) 搅拌器,分光光度计,离心机。

   (12) 透析袋,大、小烧杯,试管,吸管等。

 

  简易过碘酸钠法

  本法是以 NaIO 4先将 HRP 表面的糖分子氧化成醛基,然后再与 Ig 上的氨基相结合,所获酶标记抗体的产率高,将近 70 %的 HRP Ig 结合, 99 %的 Ig 与酶结合,酶与 Ig 的活性无重大损失,是目前最常用的方法。

   1.  原理:经典的过碘酸钠法中需采用二硝基氟苯封闭 HRP 上残留的α - 和ε氨基基以避免酶分子之间的交联。后来 Wilson 等改用在低 PH 下使 NaIO 4氧化 HRP ,从而省去了二硝基氟苯封闭 HRP 步骤。 HRP NaIO 4氧化后形成的醛化酶可与抗体分子的氨基相连,形成斯夫氏硷,后者可进一步用 NaBH ( 或乙醇胺 ) 还原生成稳定的酶标记抗体。

   2.  标记步骤 :

   (1)  称取 5mgHRP 溶解于 1ml 蒸馏水中。


   (2)  于上液中加入 0.2ml 新配的 0.1M NaIO 4溶液,室温下避光搅拌 20 分钟。

   (3)  将上述溶液装入透析袋中,对 1mM PH4.4 的醋酸钠缓冲液透析, 4 ℃过夜。

   (4)  加 20 μ l 0.2M PH9.5 碳酸盐缓冲液,使以上醛化� RP PH 升高到 9.0 9.5 ,然后立即加入 10mg IgG( 抗体,或 SPA5mg) 1ml 0.01M 碳酸盐缓冲液中,室温避光轻轻搅拌 2 小时。

   (5)  加 0.1ml 新配的 4mg ml NaBH 4液,混匀,再置 4 2 小时。

   (6)  将上述液装入透析袋中,对 0.15M PH7.4 PBS 透析, 4 ℃过夜。

  其余步骤 ( 纯化 ) 同戊二醛标记步骤的 (6) (7) (8)

   3.  结果判定:

  除标记物 IgG 量的计算,略有不同以外,其余均同戊二醛法。

   IgG (mg ml) (OD280nm-OD403nm × 0.3) × 0.62

   4.  试剂及器材
:

   (1)   0.1M NaIO 4:称取 241mg 高碘酸钠 ( 广州化学试剂厂,批号 830602) 溶于蒸馏水 10ml 中。


   (2)   1mM PH4.4 醋酸钠缓冲液 :

   0.2M NaAc (1.361 克/
50ml) 3.7ml

   0.2M HAc (0.601ml
50ml) 6.3ml

  加蒸馏水至 2,000ml


   (3)   0.2M PH9.5 碳酸盐缓冲液 :

        Na CO 0.32


        NaHCO 0.586

       加蒸馏水至 50ml

  再用蒸馏水作 20 倍稀释,即成 0.01M PH9.5 的碳酸盐缓冲液。


   (4)   NaBH 4溶液 (4mg ml):

  临用时称取 NaBH 4mg 溶于 1ml 蒸馏水中。


   (5)  其它的试剂及器材可参见戊二醛标记法。

   ( )  工作浓度的选择

  在免疫酶技术中,首先要确定的变异因素就是酶标记物的工作浓度。因为酶标记物浓度的很小变化,便可导致试验结果产生很大的波动。另外,由于浓度过高,可使非特异性反应增加,而浓度过低又可影响测定的敏感性。因此,正式试验前必须准确滴定其工作浓度。

  酶标记抗体的滴定方法是:将抗原 ( 或抗体 ) 物理吸附于固相载体上,然后将经过一系列稀释的酶标抗体 ( 或抗 Ig 抗体 ) 与吸附在载体上的抗原 ( 或抗体 ) 起反应,以酶与底物的显色反应程度来确定酶标记抗体的效价,或称工作浓度。

  其步骤为:先将抗原 ( 或抗体 ) 0.05M PH9.6 包被缓冲液稀释为 10 μ g ml 左右,于聚苯乙烯板孔内加 0.1ml 4 ℃过夜,次日以洗涤缓冲液洗涤 3 次。酶标记抗体用 1 BSA-PBS 液依次稀释成 1 100 1 200 1 400 1 800 1 1600 …… ( 根据据抗体的滴度而定 ) ,分别加入反应孔中,每个稀释度二孔,每孔 0.1ml 37 ℃孵育 1 小时后洗涤。然后加底物液,每孔 0.1ml 37 10 30 分钟。以 2M H SO 0.05ml 终止反应。

  结果判定主要以 ELISA 比色仪读取各孔 OD 值。并以 OD 为纵座标,结合物浓度为横座标,绘制滴定曲线。由曲线上查得 OD 值为 1.0 左右,且曲线斜率最大时的酶标抗体稀释度,即为该标记物的工作浓度。

  有关试验的试剂及器材均见 ELISA 部分。

  要说明的是,本法为 ELISA 直接法,所测的工作浓度与在实际应用中的最适浓度可相差几个滴度。这就要求在建立 ELISA 实验系统中,因此基础上还应进一步确定实际工作浓度 ( 可采用方阵法 ) ,以达到最适的实验条件。

   ( )  注意事项

   1.  在具备高质量 HRP 的条件下,所要标记的抗体也要活性高 , 效价高 ( 最低 1 16), 纯度高,亲和力好,这是保证标记物效价高,免疫活性好的首要条件。

   2.  所使用试剂的 PH 和浓度及用量必须严格掌握。所用试剂,最好 ( 或必需 ) 新鲜配制。如在戊二醛标记法中所用戊二醛应为新鲜纯品,因戊二醛储存过久可形成缩和体 ( 杂质 ) 。否则,影响标记效果。

   3.  室温搅拌时须避光,室内温度一般在 25 ℃为宜。标记物每次透析前,须认真检查,防止漏液。

   4.  浓的标记物相当稳定,常加入 30 40 %甘油于 -10 ℃下保存。 4 ℃可保存 1 2 年,但稀释成 1 10 ,只能保存数周。已配制的使用液应在 12 小时内用完。切忌反复冻融。

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