DNA片段纯化与回收常见问题与解决方式
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Q：利用凝胶回收试剂盒DNA回收效率较低或者未回收到目的片段?
A：
可能有以下几个原因：
1. 胶块未完全溶解，可适当延长水浴时间，并增加上下颠倒次数辅助溶解;
2. 胶块体积太大，应先将其切为小块，分多次回收;
3. 电泳缓冲液pH太高，硅基质膜在高盐低pH结合DNA，如pH太高，应作适当调整;
4. 漂洗液中未加入无水乙醇。
Q：能否改用去离子水 洗脱?
A：可以。但是实验室所用纯水一般pH偏低，可利用NaOH适当调高其pH值，以增加洗脱得率。
Q：回收DNA进行后续酶切实验?
A：洗脱产物含有残留的乙醇会影响酶切，请确保彻底去除漂洗缓冲液，具体方法参见回收效率低的解决方案。
Q：可否使用更小洗脱体积(小于说明书提供的最小洗脱体积)进行洗脱以提高浓度?
A：不可以。因为说明书提供的最少洗脱体积是能完全覆盖吸附膜的最小体积，若减少体积则不能将DNA完全洗脱下来。
Q：电泳检测只有一条目的带，可否选用凝胶回收试剂盒?
A：可以。如果后续实验对片段纯度要求较高，建议即使只有一条带，也可以切胶纯化，其回收得到片段的纯度可能要比直接回收高一些。
Q：琼脂 糖凝胶胶块不溶?
A：1. 琼脂糖质量不好。
2. 含目的片段的凝胶再空气中放置过久，使胶块失水、干燥，建议切胶后立即进行回收或将胶块保存在4℃或-20℃。
3. 制胶的电泳缓冲液浓度过高或陈旧。
