swordhearter wrote:
最近做增强完整性测试,有时候泡点合格但是扩散流不合格,有时候是扩散流流合格,但是泡点又不合格.不知道这两种情况是什么原因造成的,该如何解决呢?谢谢先!!!
要看您的测试对象是什么。
对于大面积的滤芯，用扩散流（Forward flow）更准确。
而对于小面积的Disc膜片，用泡点法（Bulb point）更可取。
888老师,我用的是10'' PVDF滤芯, 采用完整性测试仪,有时候泡点合格但是扩散流不合格,有时候是扩散流流合格,但是泡点又不合格.不知道这两种情况是什么原因造成的,该如何解决呢?
yangzhiming wrote:
888wym 老师:
你好!我想请教你几个问题,
1.我们用盐酸胍溶解包涵体,想去除盐酸胍,现在我们使用的是透析的 方法,可是放大到生产是不可取的,还有别的方法可用吗,比如说中空纤维超滤或膜过滤等,具体怎么操作.
2.HPLC纯化后的样品中含有乙腈,我们使用旋转蒸发去除,用膜过滤的方法是否更好?
请给于指导.谢谢你
很高兴收到您的问题。
1，用膜去除盐酸胍，不论是量，还是时间，都要优越很多。你就尽快解决吧。
2，同样，除去不多的乙腈，该方法同样适用。但是需要注意切割分子量的选择 .
盐酸胍溶解包含体后，直接采用超滤（膜或中空纤维），如果盐酸胍浓度变化剧烈，则重组蛋白不能复性或者复性率极低，并且会很快出现大量沉淀影响超滤过程甚至危害设备，需要注意。盐酸胍浓度降低的过程，实际上就是蛋白复性的过程，以缓慢温和为宜，所以一般采用透析或缓慢稀释的工艺。不知道yangzhiming站友操作的规模有多大，我们做过20升盐酸胍蛋白变性溶液对200升复性溶液的透析复性。有些蛋白复性，在缓慢稀释的过程中沉淀产生得不多，可以稀释复性后再超滤除盐。
hcy_sypu wrote:
888wym 老师您好！
关注您的帖子很久了，有个问题想请教您。
我们在做一个毕赤酵母分泌表达的重组蛋白，分子量在6000Da，高密度发酵得到的，发酵液40%左右是菌体，在上柱前以前是用离心的方法来澄清，效率很低，而且上清液并不很澄清。如果要产业化是否最好用TFF来澄清呢？板框过滤是否对菌丝体效果好而对类似酵母的菌体不适用呢？
我看您介绍的陶瓷膜切向流过滤技术，是否原理也象超滤膜包那样，也存在截留分子量及是否存在非特异性吸附的问题？象我这种情况，要保证滤出液澄清，又要保证6KDa目的蛋白的收率，在选择陶瓷膜时，要不要考虑膜孔径问题？
您的这个属于很麻烦的一个操作，我载工作中遇到不是头一回。
好的设备价格离谱，差的设备不能解决问题。就这么简单。
用TFF应该是不错的选择。具体袄什么产品，及多大的分子量，需要考虑 。
hcy_sypu站友，不知道你的发酵规模有多大（重组蛋白发酵规模不会很大吧）？规模许可，其实离心的办法完全可以在现有设备下解决问题，提高离心转速延长离心时间即可；规模大，可以连续流离心。其实酵母菌是容易离心下来而且会压缩得很紧密。你碰到的情况可能的原因有，离心转速时间不够，培养基中盐（硫铵）浓度较高。离心得到的上清夜，如果还不是很澄清不能满足下个工序的要求，再常规超滤处理，不过你蛋白的分子量太小，得慎重。
向楼主致敬！
swordhearter wrote:
888老师,我用的是10'' PVDF滤芯, 采用完整性测试仪,有时候泡点合格但是扩散流不合格,有时候是扩散流流合格,但是泡点又不合格.不知道这两种情况是什么原因造成的,该如何解决呢?
严格操作规范.再试试/
用扩散流方法.
泡点不准确.
润湿要彻底,溶剂要规范.如果用有机溶剂和水的混合液,比例要求准确.
测试温度要注意.22+/-5
XD_laurel wrote:
yangzhiming wrote:
888wym 老师:
你好!我想请教你几个问题,
1.我们用盐酸胍溶解包涵体,想去除盐酸胍,现在我们使用的是透析的 方法,可是放大到生产是不可取的,还有别的方法可用吗,比如说中空纤维超滤或膜过滤等,具体怎么操作.
2.HPLC纯化后的样品中含有乙腈,我们使用旋转蒸发去除,用膜过滤的方法是否更好?
请给于指导.谢谢你
很高兴收到您的问题。
1，用膜去除盐酸胍，不论是量，还是时间，都要优越很多。你就尽快解决吧。
2，同样，除去不多的乙腈，该方法同样适用。但是需要注意切割分子量的选择 .
盐酸胍溶解包含体后，直接采用超滤（膜或中空纤维），如果盐酸胍浓度变化剧烈，则重组蛋白不能复性或者复性率极低，并且会很快出现大量沉淀影响超滤过程甚至危害设备，需要注意。盐酸胍浓度降低的过程，实际上就是蛋白复性的过程，以缓慢温和为宜，所以一般采用透析或缓慢稀释的工艺。不知道yangzhiming站友操作的规模有多大，我们做过20升盐酸胍蛋白变性溶液对200升复性溶液的透析复性。有些蛋白复性，在缓慢稀释的过程中沉淀产生得不多，可以稀释复性后再超滤除盐。
您说的很好.值得探讨.
我的建议是，如果是生产的话，透析的步骤还是免的好。切向流的方式可以做的很快，也就是浓度变化剧烈，当然更可以做得很慢。调节TFF压力和膜面积，完全可以达到优化的目的。但是增加一个透析工艺，生产上会增加很多麻烦和成本。
您说是吗？
hcy_sypu wrote:
888wym 老师您好！
关注您的帖子很久了，有个问题想请教您。
我们在做一个毕赤酵母分泌表达的重组蛋白，分子量在6000Da，高密度发酵得到的，发酵液40%左右是菌体，在上柱前以前是用离心的方法来澄清，效率很低，而且上清液并不很澄清。如果要产业化是否最好用TFF来澄清呢？板框过滤是否对菌丝体效果好而对类似酵母的菌体不适用呢？
我看您介绍的陶瓷膜切向流过滤技术，是否原理也象超滤膜包那样，也存在截留分子量及是否存在非特异性吸附的问题？象我这种情况，要保证滤出液澄清，又要保证6KDa目的蛋白的收率，在选择陶瓷膜时，要不要考虑膜孔径问题？
您的这个属于很麻烦的一个操作，我载工作中遇到不是头一回。
好的设备价格离谱，差的设备不能解决问题。就这么简单。
用TFF应该是不错的选择。具体袄什么产品，及多大的分子量，需要考虑 。
hcy_sypu站友，不知道你的发酵规模有多大（重组蛋白发酵规模不会很大吧）？规模许可，其实离心的办法完全可以在现有设备下解决问题，提高离心转速延长离心时间即可；规模大，可以连续流离心。其实酵母菌是容易离心下来而且会压缩得很紧密。你碰到的情况可能的原因有，离心转速时间不够，培养基中盐（硫铵）浓度较高。离心得到的上清夜，如果还不是很澄清不能满足下个工序的要求，再常规超滤处理，不过你蛋白的分子量太小，得慎重。
向楼主致敬！
您说的有一定的道理。
离心适合小规模的产品。大量的产品，离心是有问题的，即便连续流也是问题。还有问题的关键是固形物含量太多。所以离心有问题。
实际工作中，遇到不少这样的例子。也请有经验的老师给予好的方式或者提醒。
XD_laurel and 前辈:
多谢指教,我们产品现在是中试水平, 现在做的准备是为了以后上生产.
888wym
"切向流的方式可以做的很快，也就是浓度变化剧烈，当然更可以做得很慢。"
我们的产品在盐酸胍不存在时程沉淀状态,所以还没有想到别的溶剂更换.可能会堵塞膜.
XD_laurel
"我们做过20升盐酸胍蛋白变性溶液对200升复性溶液的透析复性。有些蛋白复性".不知道您是怎么实现的,可否赐教.我们现在用的是透析膜.每次的量是500ml对10L的透析液.如果象你说的每次200L的复性液不是很浪费水嘛.有办法再利用吗?
888wym wrote:
您说的有一定的道理。
离心适合小规模的产品。大量的产品，离心是有问题的，即便连续流也是问题。还有问题的关键是固形物含量太多。所以离心有问题。
实际工作中，遇到不少这样的例子。也请有经验的老师给予好的方式或者提醒。
楼主好！收到您回复的PM，很高兴在这个网站能够结识您这样博学热情的老乡！以后去北京出差希望能当面讨教。
这里说的“规模”，我是针对hcy_sypu站友所说的“基因工程重组蛋白”生产。我了解到国内生物制药行业中基因工程这一领域中，产业化操作的规模都不是很大。我们原先750L的发酵罐，是采用的连续流收集菌体。专业背景和阅历的限制，至于生物制药行业中的其它领域，我了解不多。
yangzhiming wrote:
XD_laurel and 前辈:
多谢指教,我们产品现在是中试水平, 现在做的准备是为了以后上生产.
888wym
"切向流的方式可以做的很快，也就是浓度变化剧烈，当然更可以做得很慢。"
我们的产品在盐酸胍不存在时程沉淀状态,所以还没有想到别的溶剂更换.可能会堵塞膜.
XD_laurel
"我们做过20升盐酸胍蛋白变性溶液对200升复性溶液的透析复性。有些蛋白复性".不知道您是怎么实现的,可否赐教.我们现在用的是透析膜.每次的量是500ml对10L的透析液.如果象你说的每次200L的复性液不是很浪费水嘛.有办法再利用吗?
重组蛋白的下游工艺，主要是复性和纯化。
重组蛋白的复性，大多会产生沉淀，沉淀产生量和速度，与复性的工艺有关。即使采用透析的方法，变性剂浓度变化（下降）缓慢，仍然会有沉淀产生。为保护设备和提高工艺的稳定性及重现性，最好是复性步骤解决问题，排除沉淀对纯化的干扰。举例：用尿素变性，稀释复性，复性液中保留1~2M脲，有些蛋白并不发生沉淀，此时也可以直接上柱，但是更换无脲的溶液洗涤洗脱，则有沉淀淀积在层析胶中，对胶有伤害而且洗涤洗脱条件批次间难以稳定。再，多数蛋白复性大多对温度有所要求，尽可能保持低温操作。
如果要尽量控制复性操作规模，可以摸索尝试提高复性蛋白浓度。教科书上都是说最佳复性浓度为每毫升100微克左右，但不同蛋白间差别很大，我们就做过一种蛋白在每毫升5-8毫克的浓度下成功复性。
至于“20升盐酸胍蛋白变性溶液对200升复性溶液的透析复性”，就是把20升变性液装在透析袋中在200升复性液中透析，没有什么操作诀窍，多剪些袋子，弄两个大桶，不过这在一般的研究用实验室确实可能有点施展不开，我们是在车间的冷室进行的，搅拌用上置式。至于浪费水或溶剂，有时候是没有办法的事情。
产业化工艺的设计，工艺成本、工艺稳定性、因地制宜的可操作性，都要考虑。
向888wym 及各位楼主致意
也很感谢DXY 给了我们这些后辈一个很好的交流和学习的机会
以后我也要做纯化工艺方面的
还希望大家不吝赐教！！
888老师及各位战友大家好！我们实验室准备购置一套用于实验分析和小量制备的膜分离装置，用来分离发酵液中蛋白，现在对这方面的信息不是很了解，想请教大家，像这样的装置一般多少money?如果有这方面的资料或者是书籍，希望各位大虾不吝赐教，我这里先拜过了！
我可以给你点资料！已经PM你了！！
XD_laurel 您好！
我们要生产的规模是３吨罐，发酵液下来有2.1吨，高密度发酵50％是菌体．在中试时是100Ｌ罐，采用的是设备是连续离心，不断补加发酵液，清液流出收集，待菌体沉淀一定量时手工挖去菌体，放大后由于菌浓过高，处理效率过低，此外上清液不够澄清．佩服XD_laurel 的见解，888老师说得很有道理．
现在用的厦门一家的陶瓷膜，0.8微米,澄清效果很好，目的蛋白透过率还可以，但就是料液稀释量过大，目前也没有好的解决办法，希望和大家多多交流学习．
我还有一个难缠的问题，还请各位指教，我就把在微生物版板发的贴贴过来了：
各位专家:
我们公司在做一个酵母表达的蛋白品种,准备中试生产,在中间设备选型上碰到些问题,请专家们指教.酵母分泌表达的蛋白(6000Da)经柱层析纯化后,调pH至等点电沉淀目的蛋白后,实验过程中用小型高速离心机离心去除上清后得沉淀,但放大后,处理液体量过大,公司工程部的意见是选用带滤袋的低速离心机来富集沉淀,但在滤布选择上,我们试过小至5微米孔径的(厂家说的)对沉淀也几乎没有截留效果，这样看来，是不是这种方案行不通．也不知蛋白沉淀类产品生产中是如何富集，还请专家指点．
junlin wrote:
有位国外专家跟我谈起，他们是用卧式离心机进行固液分离。
多谢junlin帮助，我查了一下，卧式离心机也是需要有滤袋进行截留的，我这个蛋白沉淀没有合适的滤布可以截留．如果选择连续离心的话，成本就太高，还有就是我的样品液体量较大，而沉淀固体量相对较小．
领导的意思是想用过滤的方法来收集沉淀，Ｇ４的砂芯滤器又太易堵，中速滤纸及滤膜可以截留住沉淀，但处理速度上可能过慢，我又不清楚在工业生产都是采用什么样的方法来富集蛋白沉淀．
如传统生化方法提取的猪胰岛素，提到过多次锌盐沉淀，再过滤或是抽滤，我很想知道这在工业生产上是如何来实现的．还请各位专家指点．车间建设中，急啊！
首先向所有的朋友致歉。
忙于个人家庭事务，加上从公司辞职，有太多的事情需要处理。所以最近一段来得不多，所有得帖子没有很好的回复，请谅解！
我会尽量花些时间来继续和大家一起分享。
感谢所有托起这个帖子的朋友 ！
也是因为这个原因，有的朋友的事情都给耽误了，一并在这里道歉！
alibort wrote:
向888wym 及各位楼主致意
也很感谢DXY 给了我们这些后辈一个很好的交流和学习的机会
以后我也要做纯化工艺方面的
还希望大家不吝赐教！！
欢迎！
希望你也不吝智慧，和大家分享。
helig wrote:
888老师及各位战友大家好！我们实验室准备购置一套用于实验分析和小量制备的膜分离装置，用来分离发酵液中蛋白，现在对这方面的信息不是很了解，想请教大家，像这样的装置一般多少money?如果有这方面的资料或者是书籍，希望各位大虾不吝赐教，我这里先拜过了！
多少银子，不好一概而论。要看您的配置。
泵：从1000～10000不等；
Hold+管道＋连接件＋压力表：从5000～50000不等。不过我不建议您用太便宜的。一定要卫生级；
还要膜，很重要的。大约5000元
还有硅胶管。大约几百块。
请教：
我正做一色素，从植物中提取得到的，属花色苷类，单体分子量大约只有几百，但都以聚合体存在。对提取液，我试验用膜来初步纯化，结果是：0.02微米的陶瓷膜完全通过，而5000d的有机膜完全截留，有几点想法，不知是否可行，请提供帮助：
1、采用孔径小于0.02微米，而大于5000d的膜，截留除去更多的杂质，而让色素完全通过，是否可行？（由于我手头没有在这之间的膜，没有试验）
2、通常，一种植物的茎叶部分，分子大小在0.02微米与5000d之间，是否有很多的杂质（花色苷以外的成分），换名话说：草本植物的茎叶部分，在0.02微米与5000d之间，是否有更多的成分分布？
您的试验，我需要确证一下几个问题
1，聚合体分子量到底多大 ？
2，您用的膜，虽然标示5KD和0.02um，实际情况怎么样 ？您需要用标准品去作标准曲线 ，确认分子量的可信度。
3，据我所知，0。02um的陶瓷膜，基本上不准确。
4，您的 色素成分，在膜上有吸附吗？
5，讨论叶子的成分分子量分布，基本上不可能。我 敢肯定的说，各种分子量均存在。有植物色素，蛋白质，核酸，叶绿素，多糖，脂类物质，应有尽有。毕竟它已经是高度进化的生物。
我建议：
1，确认聚合体的解离条件，在合适的条件下——尽可能让它解离时作试验。
2，如果作不到，就尽量试验用合适的分子量膜分离。选择的膜的分离“S”形曲线要尽量陡峭。不好的膜无法给出合适的结果，这样的话，你给出的结果只能把别人带到歧路。
等到有准确的结果后，再给你分析。
可以用常规的方法去除蛋白质和杂质，然后进一步分离。
仅供参考。
非常感谢你在深夜为我解答！
1、聚合体分子量到底多大，我真是不清楚，因为它们之间主要以分子间作用力结合；
2、以前也用过膜，主要是中药注射剂除菌，但用膜来进行工艺研究还是第一次。我有疑问的是：买回来的膜都需要用标准品去验证吗？那岂不是将厂家应该做的工作让我们来做了？我的感觉是，正规的产品应该都是有出厂检验的，说到这里，我想到与膜生产厂家联系一下，毕竟，我的膜可都是上万元1支买回来的。
话再说回来，如果是用标准品验证的话，老兄有哪些这方面的经验，比如：常用的标准品、浓度、操作方法等，望指教。
3、如何简单快捷地检验膜是否有吸附？（膜可是装在套子里，看不见）
4、膜分离的“S”形曲线是什么意思？这主要是由膜自身决定的吗？
5、我手头没有万级分子量的膜，我想再买几支小一点的来试一试。
6、等有时间了，我想做几种植物的成分分子量分布，用不同孔径的膜分段截留，干燥每一段，称重，计算百分比，你认为可行否？
再次表示感谢！
1、测试膜截留分子量超滤一般采用相对应分子量的聚乙二醇溶液，看截留率来考察的，这些都应该是膜生产厂家来做的，一般的话，都不会相差太远了，除非膜本身有问题！！2、检验膜有没有吸附，要以收率来计算，就是过膜前后的色素总量的变化；3、对了想请教888wym 老师：膜分离的“S”形曲线是什么意思？4、如果需要万级分子量的膜，可以PM我！！
championchina wrote:
非常感谢你在深夜为我解答！
1、聚合体分子量到底多大，我真是不清楚，因为它们之间主要以分子间作用力结合；
2、以前也用过膜，主要是中药注射剂除菌，但用膜来进行工艺研究还是第一次。我有疑问的是：买回来的膜都需要用标准品去验证吗？那岂不是将厂家应该做的工作让我们来做了？我的感觉是，正规的产品应该都是有出厂检验的，说到这里，我想到与膜生产厂家联系一下，毕竟，我的膜可都是上万元1支买回来的。
话再说回来，如果是用标准品验证的话，老兄有哪些这方面的经验，比如：常用的标准品、浓度、操作方法等，望指教。
3、如何简单快捷地检验膜是否有吸附？（膜可是装在套子里，看不见）
4、膜分离的“S”形曲线是什么意思？这主要是由膜自身决定的吗？
5、我手头没有万级分子量的膜，我想再买几支小一点的来试一试。
6、等有时间了，我想做几种植物的成分分子量分布，用不同孔径的膜分段截留，干燥每一段，称重，计算百分比，你认为可行否？
再次表示感谢！
方便的话，打电话给我。详细了解您的情况后，再给您建议。
我担心我的有些提法把您引导到不合适的途径。
归根到底，我们要用最简单的方法，最小的花费达到您想得到的结果。
之所以要您用标准品检验，那是因为 我拿不准您的膜到底有没有标准，来源如何？
如果有，而且很可靠，您就不必这样做。
您的分子量大小，很简单的办法是用标准品作色谱，一针就见分晓。
“S“形曲线，是指膜的截流是一个相对的概念。不是说10KD的膜，就是10KD以下全部透过，以上全部截流。把截流分子量的百分比和分子量大小做图得到的曲线，就是”S“形曲线。衡量这个标准就是”S“形曲线。
兼解答想卖膜的那位。不过我奇怪的是，你既然卖膜，不会不知道”S“形曲线吧？
大家都是代理国外膜的同行，一起交流讨论，不懂就请教！！只是“S”曲线这个说法比较少听说而已。谢谢888wym老师的指教！！还有想请问888wym
一下，你的膜就比较标准吗？
问个层析仪的问题
1,进口的层析仪除了AKTA 和Bio-rad外还有什么牌子的?实验室规模的,带UV,conductance,可连电脑. pH可带可不带.
2,用的是什么类型的泵,耐多少压.
3,大概多少价格
这里有知道这方面信息的么?谢谢回答
Waters有制备系统，泵耐压较高，更多用于制备反相，中低压用的较少，因为没有必要。PrepLC 300 ml价格估计要2~3万美金，连上检测器一共估计得5万美金。
好像Pall也有中低压层析系统。你可以打听一下
laboy wrote:
问个层析仪的问题
1,进口的层析仪除了AKTA 和Bio-rad外还有什么牌子的?实验室规模的,带UV,conductance,可连电脑. pH可带可不带.
2,用的是什么类型的泵,耐多少压.
3,大概多少价格
这里有知道这方面信息的么?谢谢回答
1,法国的BIOSEPR,也带PH
2,我说不上泵的名字,很古怪的泵,不大,但是很奇妙.如果一定要知道,我再帮您找答案.
3,大小价格不一样; 成交的价格大约: 1~100ml/min系统,60KUSD; 10~1000ml/min,90KUSD.
有兴趣的话,我再给您找资料.
请教：抗血清经硫酸氨沉淀以后，需去除其中的硫酸铵盐，透析相对繁琐。我想采用超滤的方法以达到透析的效果，由此就需要购买一套超滤设备。我对超滤设备所知不多，请帮忙推荐一下，包括泵的选择（应该会用到的吧）、超滤器的选择、膜的选择。需超滤的溶液体积为10L以内，目标蛋白是抗体，IgG的分子量应该是150kd。谢谢！
红红的苹果 wrote:
请教：抗血清经硫酸氨沉淀以后，需去除其中的硫酸铵盐，透析相对繁琐。我想采用超滤的方法以达到透析的效果，由此就需要购买一套超滤设备。我对超滤设备所知不多，请帮忙推荐一下，包括泵的选择（应该会用到的吧）、超滤器的选择、膜的选择。需超滤的溶液体积为10L以内，目标蛋白是抗体，IgG的分子量应该是150kd。谢谢！
选择10KD，或者30KD的膜。
小型0，1Mundefined2PCS
系统包括泵。
biosepq wrote:
Waters有制备系统，泵耐压较高，更多用于制备反相，中低压用的较少，因为没有必要。PrepLC 300 ml价格估计要2~3万美金，连上检测器一共估计得5万美金。
好像Pall也有中低压层析系统。你可以打听一下
没想到biosepq斑竹还在这里回复我的帖子,非常感谢
记得你也是做抗体方面的专家了
不知道你有私下的联系方式么,想私下交流一下,可以pm么?
888wym wrote:
1,法国的BIOSEPR,也带PH
2,我说不上泵的名字,很古怪的泵,不大,但是很奇妙.如果一定要知道,我再帮您找答案.
3,大小价格不一样; 成交的价格大约: 1~100ml/min系统,60KUSD; 10~1000ml/min,90KUSD.
有兴趣的话,我再给您找资料.
888wym兄 有这方面的资料么?
可以发点,非常感谢
laboy wrote:
888wym兄 有这方面的资料么?
可以发点,非常感谢
我找找。然后发过来。
那就谢了
仁兄好，我有一问题想向您请教，我的样品时经过制备HPLC制得的，样品浓度很低，主要含有乙腈、水和0.1%的TFA，我想请教一下，这样的溶液可以直接进行超滤，去除TFA浓缩样品吗？对了，我的样品大概是小分子的多肽，分子量比较小，1000d以上吧。如果直接超滤不行得话，将TFA转化成盐后再进行超滤能够达到去除盐、浓缩多肽的效果吗？如果可以的话应该用什么样的柱子？
我是这方面的新手，对于超滤一点也不懂，提得问题可能有些可笑，请仁兄包涵，并不吝赐教。
proteinwang wrote:
仁兄好，我有一问题想向您请教，我的样品时经过制备HPLC制得的，样品浓度很低，主要含有乙腈、水和0.1%的TFA，我想请教一下，这样的溶液可以直接进行超滤，去除TFA浓缩样品吗？对了，我的样品大概是小分子的多肽，分子量比较小，1000d以上吧。如果直接超滤不行得话，将TFA转化成盐后再进行超滤能够达到去除盐、浓缩多肽的效果吗？如果可以的话应该用什么样的柱子？
我是这方面的新手，对于超滤一点也不懂，提得问题可能有些可笑，请仁兄包涵，并不吝赐教。
不是超滤的问题，是您的产品分子量太小，无法选择合适的膜来进行操作。用1kD对于膜的选择性，比较麻烦，虽然超滤脱盐是经常用到的。或者用1KD的膜，您的多肽损失很大。
laboy wrote:
888wym兄 有这方面的资料么?
可以发点,非常感谢
抱歉。答应您尽快给你资料，但是一直没有。
该产品价格不菲，性能不错。
USD2356 - PKL Systems brochure.pdf (257.96k)
弱弱的问一下，17kD与我们平常使用的单位g/mol怎么换算
我将一个螯合剂与单抗相连，螯合剂的分子量大约500,单抗的分子量是170000，连接以后有什么好的方法可以将它们分开呢？
因为我的单抗很少，一次实验只能投零点几mg，很怕损失，请各位老师给点建议，谢谢
(责任编辑：大汉昆仑王)
