哺乳动物基因组DNA制备
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一、目的及要求 1. 掌握提取基因组DNA的原理和方法、步骤。 2. 了解相对分子质量较大的DNA的琼脂糖凝胶电泳技术。 二、实验原理
制备基因组DNA是进行基因结构和功能研究的重要步骤,通常要求得到的片段的长度不小于100-200kb。在DNA提取过程中应尽量避免使DNA断裂和降解的各种因素,以保证DNA的完整性,为后续的实验打下基础。一般真核细胞基因组DNA有107-9bp,可以从新鲜组织、培养细胞或低温保存的组织细胞中提取,常是采用在EDTA以及SDS等试剂存在下用蛋白酶K消化细胞,随后用酚抽提而实现的。这一方法获得的DNA不仅经酶切后可用于Southern分析,还可用于PCR的模板、文库构建等实验。 三、仪器与耗材 仪器:台式离心机、玻璃匀浆器、高压灭菌锅、恒温水浴器、微量取样器和吸头、无菌过滤器、10mL注射器 耗材: Eppendorf管、吸头 四、试剂 1. 0.5M Tris-HCl(pH8.0) 2. 0.5M EDTA(pH 8.0) 3. 5MNaCl 4. 3M NaAc(pH 5.2) 以上均高压灭菌 5.鼠肝 6.组织匀浆液:100mMNaCl,10mM Tris-HCl(pH8.0),25 mM EDTA(pH8.0) 7.酶解液:200mMNaCl,20mM Tris-HCl(pH8.0),50 mM EDTA(pH8.0),200μg/mL蛋白酶K,1%SDS 8.TE缓冲液:1 mM EDTA (pH8.0),10 mM Tris-HCl (pH8.0) 9.蛋白酶K:10mg/mL配好后用一次性过滤器过滤,-20℃保存。 10.RNA酶:将胰RNA酶溶于10mM Tris-HCl(pH7.5),15mMNaCl溶液中,浓度10mg/mL,于100℃水浴处理15min以降解DNA酶,缓慢冷却到室温,-20℃保存。 11.λDNA/EcoRI+HindIII marker 12.酚:氯仿:异戊醇=25:24:1(体积比) 13.氯仿:异戊醇=24:1(体积比) 14.5XTBE(5倍体积的TBE储存液) Tris 54g 硼酸27.5g 总体积1000mL pH8.0 15.6X上样缓冲液:0.25%溴酚蓝,40%(W/V)蔗糖水溶液 16.动物基因组DNA快速提取试剂盒 五、操作步骤(两人一组) (一) 小鼠肝脏DNA制备 1.取200mg鼠肝,用冰块处理研磨直至无组织块存在。将粉末移入1.5ml离心管中加入1ml溶液B,震荡均匀,室温放置5分钟。 2.12000rpm离心5分钟。 3.将上清移入5ml离心管中,加入2.5ml溶液C,20ml溶液A,50ml溶液D,充分混匀,室温放置20分钟。 4.10000r/min离心5min,弃上清。 5.加入溶液C,充分混匀,10000r/min离心2min,弃上清。 6加入溶液E,充分混匀,10000r/min离心2min,弃上清 7.重复6步骤 8.12000r/min离心2min,吸干上清,室温干燥(不要太干,否则DNA不易溶解)。 9.取溶液F200μL ,混匀,40-50℃水浴5分钟。 10.12000rpm离心2分钟,上清即是实验动物基因组DNA。 (二) 电泳检测 由于基因组DNA分子质量较大,用0.3%的琼脂糖凝胶电泳鉴定,先在底部铺一层1%的支持胶,凝固后在铺上一层0.3%琼脂糖凝胶,插上梳子(不能碰到支持胶)。取1.5μL溶解的DNA、1μL上样缓冲液和3.5μL无菌水混匀后小心上样观察基因组DNA大小。 六、注意事项
1. 所有用品均需要高温高压,以灭活残余的DNA酶。 |