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荧光抗体的制备实验

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(一)免疫球蛋白的提取
(二) 荧光素
1. 荧光色素的基本条件
(1)具有化学活性基团,如异硫氰基(-NCS)等,易与免疫球蛋白结合形成共价键。
(2)对免疫球蛋白无毒性,不影响抗体活性。
(3)荧光效应高,与蛋白结合需要量少。
(4)荧光素性能稳定,结合物性能稳定,容易贮藏。
(5)结合物的颜色必须与背景组织有良好的反衬作用,易于观察判定。
到目前为止,基本符合上述要求的荧光素只有异硫氰酸荧光素(FITC),丽丝胺罗丹明B 200 (RB 200 )。
2.常用的荧光色素
(1)异硫氰酸荧光素 :又称异硫氰酸荧光黄,纯品为橙黄色粉末。分有结晶型与粉末型两种,结晶型荧光强度大、稳定、优于粉末型。分子式C 21 H 11 O 2 N 5 、分子量389,溶于水,易溶于pH8-9.5碳酸盐缓冲液中。最大吸收波长为495nm。最大发射波长520nm。异硫氰酸荧光黄性质稳定,于低温下可保存二年以上,但久置标记抗体能力弱,荧光亮度差,故应采用新产品。
异硫氰酸荧光素借助异硫氰基与蛋白中氨基酸(主要是赖氨酸)的氨基结合。一个IgG分子有86个氨基酸残基,一般最多能标记16~20个荧光素分子。
(2)丽丝胺罗丹明:为褐色粉末,不溶于水、易溶于酒精和丙酮。荧光为桔红色。性质稳定,可长期保存。分子式C 23 H 29 O 7 NaS 2 ,分子量为580,最大吸收波长570nm,最大发射波长为600nm。
由于丽丝胺罗丹明荧光效能较低,一般不单独使用,多用于与FITC标记抗体的反衬染色或双标记配合使用。此染料不能直接与蛋白质结合,必须先用五氯化磷(PCl 5 )处理,使染料的-SO 3 Na基变为-SO 3 Cl基后,才能在碱性条件下与赖氨酸的氨基结合,形成稳定的硫氨键。
(三) 标记方法
异硫氰酸荧光素常用的标记法有以下两种:
1. 搅拌法
(1)取一定量的纯IgG液,用0.5Mol/L pH9.5碳酸盐缓冲液稀释至20mg/ml。
(2)按荧光素与蛋白质比1︰20~1︰100(一般用1︰100)称取异硫氰酸荧光素,用pH9.5碳酸盐缓冲液溶解。
(3)将球蛋白液置于电磁搅拌器上,启动开关,轻轻搅拌,以不起沫为准。逐滴加入荧光素液(约10min~15min加完)。加完后,随时用试纸测定搅拌液的pH值,若低于9.0,则应以碳酸钠溶液调整。置4℃搅拌6h~12h即可。
2. 透析法  免疫学实验技术论坛   http://bbs.bbioo.com/forum-140-1.html
(1)将IgG液以0.5Mol/L pH9.5碳酸盐缓冲液稀释成1%浓度,装入透析袋中。
(2)将荧光素配成0.1mg/ml,其量为1%蛋白液的10倍,装入烧杯中。
(3)将透析袋置于烧杯中,放电磁搅拌器上4℃搅拌24即可。
透析法的优点是标记均匀,非特异性荧光少,但所标记的时间长,荧光素的用量多,约比搅拌法多10倍。
3.影响标记的因素
(1)荧光素与蛋白质的比值:这也取决于荧光素的质量与保存期。一般而言,粉末状荧光素以0.025mg/mg~0.05mg/mg蛋白质为宜,而结晶型则只需0.006mg/mg~0.008mg/mg蛋白质即可。
蛋白含量以20mg~25mg/ml为宜,浓度过低标记过慢。浓度过高,标记效果不好。不过在实践中,以稍高一些蛋白浓度为好。
(2)pH值:以pH9.0~9.5为最好。过低标记速度慢,过高蛋白质容易变性。
(3)温度和时间:温度4℃~25℃均可。温度与时间是成正比的,温度低,反应慢,温度高,反应快。4℃需要6h~12h,7℃~9℃需要3h~4h,20℃~25℃只需要1h~2h。实践中可自选。透析法还是以4℃较长时间反应为好。
(4)荧光素的质量及有效期。
(四)标记抗体的纯化
标记后溶液是一个混合体,它包括蛋白质与荧光素的结合体,还有游离的荧光素、游离的蛋白质以及结合过多的蛋白质。对于某些细菌性的诊断荧光抗体,则只要去除游离的荧光素即可。对于一般组织染色荧光抗体,则要去除过度标记的抗体即可。只是对某些特殊要求的组织染色 试剂 ,则必须经过仔细的处理,包括具有特异性交叉反应或非特异性反应性的除去。
1. 去除游离的荧光素
(1)透析法:将标记好的抗体放入透析袋中于0.01Mol/L pH7.6 PBS中或生理盐水中4℃透析数天,每天换液数次,直至透析液中无游离色素为止。通常约需5~7天才能透析完毕。
(2)凝胶过滤:以G 25 或G 50 葡聚糖凝胶装柱进行过滤。次法速度快,一般1h~2 h即可完成。也可以先透析4h~5h,让大部分游离荧光素除去,再过G 25 或G 50 柱。
2. 去除过度标记的蛋白质分子 可采用DEAE—纤维素过柱法。利用阶梯洗脱法进行,具体方法如下:
(1)以0.01Mol/L pH 7.6 PB液洗脱。
(2)以0.01 Mol/L pH 7.6 PBS液(0.05Mol/L NaCl)洗脱。
(3)以0.01 Mol/L pH7.6 PBS(0.1Mol/L NaCl)洗脱。
(4)以0.01 Mol/L PH 7.6PBS(0.2Mol/L NaCl)洗脱。

 

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