免疫细胞化学的有关技术概述
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一、抗体的制备和配制
(一)抗体的制备
这是免疫细胞化学技术的首要试剂,必需制备具有很高特异性和敏感性的高效价抗体,这将在本书第二章 中详述。目前国内外市场各种特异性抗体日益增多,许多实验室直接应用市售产品,现在我国自制抗体种类少,发展抗体生产十分必要。尤其要定位一种新的抗原物质,能够自制较好。
(二)抗体的配制
包括抗体贮存液和抗体使用液的配制方法。新制备或购进的是原液或冻干品,抗血清为全血清,单克隆抗体是培养上清液或腹水。
1.抗体贮存 获得新抗体后,应先根据生产厂家提供的抗体效价,将其分装,可每10μl或100μl/支分装入安瓿或0.25ml带盖塑料管中,密封。放入-20。C~40。C冰箱中保存备用,一般可保存1~2年。小量分装的抗体可1次用完,避免反复冻融而影响效价的降低。一般用前新鲜配制使用液体,稀释的抗体不能长时间保存,在4。C可存入1~3天,超过7天效价显著降低。
2.抗体使用液的配制 这是任何免疫细胞化学方法中最重要的一环,无论是一抗、二抗和各种标记抗体,用前都必须按不同免疫染色方法和抗原性强弱与抗原的多少,稀释使用的各种抗体原液,以便获得最佳免疫染色结果。
(1)抗体最佳稀释度的测定方法:用已知阳性抗原切片,进行免疫染色,将其阳性强度与背景染色强度以“+”表示,可分为++++、+++、++、+、(-)。++++为最强阳性,+++为强阳性,++为较强阳性,+为弱阳性,(-)为阴性。
①直接测定法:用于测定第一抗体的最佳稀释度,其它条件稳定可靠。将一抗稀释为1:50、1:100、1:2001:400、1:500等5个稀释度滴加在阳性抗原切片上,同时设一替代和阴性对照,结果如表1-1:
表 1-1 选择最佳稀释抗血清方法
一抗稀释度 | 特异性染色强度 | 非特异性背景染色度 |
1:50 | ++++ | ++ |
1:100 | ++++ | ++ |
1:200 | ++++ | ++ |
1:400 | +++ | + |
1:500 | ++ | (-) |
阴性对照 | (-) | (-) |
从表中结果可见,第一抗体稀释到1:400时阳性结果呈强阳性,背景染色减少,其最佳稀释度在1:400~500之间。再作1:420、1:440、1:460、1:480、1:500稀释后染色,找出最佳稀释度。
②棋盘(方阵)测定方法:当测定两种以上抗体的最佳配合稀释度时,必须采用此法(见表1-2)。
表1-2 两种以上抗体最佳配合稀释度选择表
第二抗体 | 第 一 抗 体 | |||
1:500 | 1:1000 | 1:2000 | 1:4000 | |
1:100 | ++++(++) | ++++(+) | +++(±) | +(-) |
1:200 | ++++(+) | +++(-) | ++(-) | ++(-) |
1:400 | ++(-) | +(-) | - | - |
括号内为背景染色结果