蛋白质分子量测定[凝胶层析法]
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一、实验目的
1. 了解凝胶层析的原理及其应用。
2. 通过测定蛋白质分子量的训练,初步掌握凝胶层析技术。
二、实验原理
凝胶层析又称排阻层析,凝胶过滤,渗透层析或分子筛层析等。它广泛地应用于分离、提纯、浓缩生物大分子及脱盐、去热源等,而测定蛋白质的分子量也是它的重要应用之一。凝胶是一种具有立体网状结构且呈多孔的不溶性珠状颗粒物质。用它来分离物质,主要是根据多孔凝胶对不同半径的蛋白质分子(近于球形)具有不同的排阻效应实现的。亦即它是根据分子大小这一物理性质进行分离纯化的。对于某种型号的凝胶,一些大分子不能进入凝胶颗粒内部而完全被排阻在外,只能沿着颗粒间的缝隙流出柱外;而一些小分子不被排阻,可自由扩散,渗透进入凝胶内部的筛孔,尔后又被流出的洗脱液带走。分子越小,进入凝胶内部越深,所走的路程越多,故小分子最后流出柱外,而大分子先从柱中流出。一些中等大小的分子介于大分子与小分子之间,只能进入一部分凝胶较大的孔隙,亦即部分排阻,因此这些分子从柱中流出的顺序也介于大、小分子之间。这样样品经过凝胶层析后,分子便按照从大到小的顺序依次流出,达到分离的目的。
凝胶层析分离原理示意图参见64页的“图 3-5”。
对于任何一种被分离的化合物在凝胶层析柱中被排阻的范围均在0~100%之间,其被排阻的程度可以用有效分配系数Kav(分离化合物在内水和外水体积中的比例关系)表示,Kav值的大小和凝胶柱床的总体积(V
t
)、外水体积(V
0
)以及分离物本身的洗脱体积(V
e
)有关:
Kav = (V
e
-V
0
)/(V
t
-V
0
) ----------- (1)
在限定的层析条件下,Vt和V0都是恒定值,而Ve是随着分离物分子量的变化而改变。分子量大,Ve值小,Kav值也小。反之,分子量小Ve值大,Kav值大。
65页的“图 3-6”画出了凝胶层析柱中凝胶自身(基质)体积(V
g
)、外水体积(V
0
)、内水体积(V
i
)及柱床总体积(V
t
)的示意图。
65页的“图 3-7”示出了凝胶层析柱中的几种层析峰。
有效分配系数Kav是判断分离效果的一个重要参数,同时也是测定蛋白质分子量的一个依据。在相同层析条件下,被分离物质Kav值差异越大,分离效果越好。反之,分离效果差或根本不能分开。在实际的实验中,我们可以实测出V
t
、V
0
及V
e
的值,从而计算出Kav的大小。对于某一特定型号的凝胶,在一定的分子量范围内,Kav与logMw (Mw表示物质的分子量) 成线性关系:
Kav =-b logMw + C --------- (2)
其中 b,C为常数。
同样可以得到:
Ve =-b’logMw + C’ --------- (3)
其中 b’, C’为常数。即 Ve 与 logMw 也成线性关系。我们可以通过在一凝胶柱上分离多种已知分子量的蛋白质后,并根据上述的线性关系绘出标准曲线,然后用同一凝胶柱测出其它未知蛋白的分子量。
三、器材与
试剂
(一)器材
1. 玻璃层析柱((20mm×60cm)
2. 恒流泵(或下口恒压贮液瓶)
3. 自动部分收集器
4. 紫外分光光度计
5. 100ml
试剂
瓶
6. 1000ml量筒
7. 250ml烧杯
8. 50ml、100ml烧杯
9. 10ml(或5ml)刻度试管
(二)试剂
1. 标准蛋白
(1)牛血清白蛋白:Mw=67,000(上海生化所)
(2)鸡卵清清蛋白:Mw=45,000(美国SIGMA公司)
(3)胰凝乳蛋白酶原A:Mw=24,000(美国SIGMA公司)
(4)溶菌酶:Mw =14,300
2. 未知蛋白质样品:由实验室准备
3. 0.025M KCl-0.1M HAC(乙酸)(洗脱液1000ml)