凝胶层析法-蛋白质的分离实验
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原理
凡盐析所获得的粗制蛋白质（盐析得到的IgG）中均含有硫酸铵等盐类，这类将影响以后的纯化，所以纯化前均应除去，此过程称为“脱盐”（desalthing）。脱盐常用透析法和凝胶过滤法，这两种方法各有利弊。前者的优点是透析后析品终体积较小，但所需时间较长，且盐不易除尽；凝胶过滤法则能将盐除尽，所需时间也短，但其凝胶过滤后样品体积较大。所以，要根据具体情况选择使用。前实验中样品体积较小，凝胶达滤后样品体积不会太增加，所以选用凝胶过滤法。
材料与仪器
Sephadex G-25 葡聚糖凝胶G-25
磷酸盐缓冲液 碘化钾 碘 汞 蒸馏水 磺基水杨酸溶液
锥形瓶 量筒 层析柱 比色磁盘 试管 皮头滴管
步骤
一、试剂与器材
1. Sephadex G-25。
2. 0.0175 mol/L，pH6.7磷酸盐缓冲液。
3. 奈氏（Nessler）试剂：于500 ml锥形瓶内加入碘化钾150 g，碘110 g，汞150 g及蒸馏水100 ml。用力振荡7～15 min，至碘的棕色开始转变时，混合液温度升高，将此瓶浸于冷水内继续振荡，直到棕色的碘转变为带绿色的碘化钾汞液为止。将上清液倾入2000 ml量筒内，加蒸馏水至2000 ml，混匀备用。
4. 20%（W/V）磺基水杨酸溶液。
5. 1.5cmx20 cm层析柱。
6. 黑、白比色磁盘。
二、操作
1. 取层析柱1支（1.5 cmx20 cm），垂直固定在支架上，关闭下端出口。将已经溶胀好的Sephadex G-25中的水倾倒出去，加入2倍体积的0.0175 mol/L，pH6.7磷酸盐缓冲液，并搅拌成悬浮液，然后灌注入柱，打开柱的下端出口，继续加入搅匀的Sephadex G-25，使凝胶自然沉降高度到17 cm左右，关闭出口。待凝胶柱形成后，在洗脱瓶中加入0.0175 mol/L，pH6.7磷酸盐缓冲液以3倍柱体积的磷酸盐缓冲流过凝胶柱，以平衡凝胶。
2. 凝胶平衡后，用皮头滴管除去凝胶柱面的溶液，将盐析所得全部IgG样品加到凝胶柱表面，打开柱下口，控制流速让IgG样品溶液慢慢浸入凝胶内。凝胶柱面上加一层的0.0175 mol/L，pH6.7磷酸盐缓冲液，并用此缓冲液洗脱，控制流速为0.5 ml/min左右。用试管收集洗脱液，每管10滴。
3. 在开始收集洗脱液的同时检查蛋白质是否已开始流出。为此，由每支收集管中取出1滴溶液置于黑色比色磁盘中，加入1滴20%磺基水杨酸，若呈现白色絮状沉淀即证明已有蛋白质出现，直到检查不出白色沉淀时，停止收集洗脱液。
4. 由经检查含有蛋白质的每管中，取1滴溶液，放置在白色比色盘孔中，加入1滴奈氏试剂，若呈现棕黄色沉淀说明它含有硫酸铵。合并检查后不含硫酸铵的各管收集液，即为"脱盐”后的IgG。
注意：在检测时，用皮头滴管吸取管中溶液后应及时洗净，再吸取下一管，以免造成相互污染假象。
注意事项
在检测时，用皮头滴管吸取管中溶液后应及时洗净，再吸取下一管，以免造成相互污染假象。
来源：丁香实验
