基因工程抗体细胞质表达
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基因工程抗体细胞质表达
胞内表达抗体主要采用高表达方式,其表达结果因抗体片段的不同而有较大差异,主要取决于翻译起始位点的设计、片段对蛋白酶的敏感性和宿主菌。高表达抗体的结果常常是以包涵体(inclusion body)形式存在,除载体方面的原因外,这可能与抗体表面疏水性强有关。包涵体可以防止宿主对抗体的降解,并利于纯化。经过变性、复性及去除蛋白的N端甲酰甲硫氨酸或甲硫氨酸,可以得到重新折叠的有抗原结合活性的天然分子。对于不同的蛋白,复性条件是不同的。
【材料和试剂】
(1)大肠杆菌XL1-Blue。
(2)载体pROH80,携带谷胱甘肽转移酶基因(GST),能与插入的抗体基因表达出融合蛋白(GST-ScFv)。
(3)抗膀胱癌McAb重链(VH)366bp和轻链(VL)324bp基因,连接肽为(GGGGS)3。
(4)超声仪(Cole Parmer4710)。
(5)IPTG。
(6) 包涵体溶解液:0.2mol/L Tris-HCl pH8.2、0.1mmol/L β-巯基乙醇。
【操作步骤】
(1)将VH、VL基因分别插入载体pROH80的克隆位点,构建成单链抗体ScFv,转化XL1-Blue感受态细胞,筛选的阳性克隆用酶切鉴定。
(2)接种单菌落(含pRS80)于2ml LB培养基(含Amp 0.1mg/ml),37℃培养过夜。次日,1:100稀释加至LB中,37℃培养3~4h,至OD600 约1.5时,加入0.1~1mol/L IPTG,转至30℃诱导4~6h。
(3)将培养的菌液于4000r/min离心10min,收集菌体,重悬于PBS中,超声破碎细胞(duty circle 30%,output 4,20min),12 000r/min离心20min,收集沉淀物。
(4)将沉淀物用3mol/L尿素、25mmol/L Tris-HCI pH8.0 10mmol/L EDTA溶液洗涤5次,每次12 000r/min离心20min,收集沉淀。
(5)用包涵体溶解液(0.2mol/L Tris-HCl pH8.2、0.1mmol/L β-巯基乙醇)悬浮沉淀,定温3~5h,待溶液清澈透明,1000r/min离心20min,收集上清。
(6)将变性的包涵体蛋白用6mol/L尿素、2.5mmol/L Tris-HCl pH8.0,lmmol/L EDTA,5mmol/L DTT溶液透析,4℃。
(7)透析过的包涵体溶液经DE-52离子交换柱洗脱,紫外检测收集蛋白峰,经15%SDS-PAGE电泳检测纯度。
(8)对收集的蛋白溶液,用3mol/L尿素、25mmol/L Tris-HCl pH8.0、1mmol/L氧化型谷胱甘肽、0.1mmol/L还原型谷胱甘肽溶液稀释至蛋白浓度为0.1mg/ml,室温复性24~48h。