农杆菌介导ACC脱氨酶基因转化新疆哈密瓜的研究
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农杆菌介导ACC脱氨酶基因转化新疆哈密瓜的研究
李晓荣1 廖 康2 宫江平3 赵长生4 王 惠4
1 新疆农科院核生所,乌鲁木齐备 830000 2 新疆农业大学园艺学院,乌鲁木齐备 830000
3 新疆农科院园艺所,乌鲁木齐备 830000 4 中国科学院新疆分院生态与地理研究所,乌鲁木齐备 830000
关键词:哈密瓜 ACC脱氨酶基因 乙烯
新疆素有“瓜果之乡”的美称,作为新疆的特色产品―哈密瓜则更是名扬海内外。应用转基因技术开辟一条新的保鲜途径,从遗传性调整生理功能,提高哈密瓜的保鲜性能。ACC脱氨酶可将ACC降解为丁酮酸和氨气,从而降低植物体内乙烯含量,达到控制果实成熟的目的,延缓哈密瓜采后迅速成熟和衰老,使果实有较长保鲜期、抗裂抗机械损伤、抗真、细菌继发性感染等特性。有利于外运、延长货架期,可以培育稳固的哈密瓜市场,也可避免采摘期的过分集中,调节季节性供应货期向周年方向发展。
1 材料与方法
1.1 供试材料及实验地点
皇后、伽师瓜种子由新疆农科院园艺所提供。本实验在新疆农业大学园艺学院组织培养实验室完成。
1.2 农杆菌菌株
大肠杆菌DH5α为受体菌,克隆质粒为PUC19,植物表达载体为PROKⅡ,根癌农杆菌菌株LBA4404,由中国科学院北京微生物所提供。具有ACC脱氨酶基因,长度为1kb,位于表达载体pROKⅡ35s上。
1.3 实验方法
1.3.1 哈密瓜无菌苗的获得 分别取皇后、伽师瓜种子去皮,70%的酒精溶液浸泡1min,再用0.1%的升汞溶液消毒6~8min,无菌水冲洗3遍后接种于MS培养基中进行培养。要求培养室温度为28±1℃,光照3 000Lx左右,每日光照14~16h 〔1〕。
1.3.2 哈密瓜转化植株的获得 根据对子叶日龄、外植体种类、外源激素浓度配比〔2〕、AgNO3的用量、琼脂、及蔗糖浓度等与植株再生相关的因素进行分阶段实验,获得再生植株。根据对菌液浓度、AS(乙酰丁香酮)浓度、侵染时间、共培养时间(暗培时间)、Amp(氨苄青霉素)浓度、km(卡那霉素)浓度、GA3浓度等进行梯度实验〔3〕,确定获得转化植株的培养基配方。
(1) 农杆菌工程菌液的制备
在含km100mg.l-1和利福霉素100mg.l-1的LB固体培养基上取试管斜面保存的农杆菌划线,约40h后挑取单菌落于的LB液体培养基中,振荡培养20h左右.收集菌体用MS液悬浮,加入AS200µmol.l-1, 振荡培养4h。要求菌液的OD值约为0.3~0.5(600nm)。
(2) 哈密瓜外植体的侵染
分别取皇后、伽师瓜4~5日龄子叶,切成0.5×0.5cm小块,根据品种确定其侵染时间,对照子叶侵染MS液。侵染后取出子叶块,用无菌滤纸充分吸干,然后接种于共培养培养基MS+BA1.0mg.l-1 +蔗糖30g.l-1+琼脂7.5g.l-1,置于暗室进行共培养(28±1℃)。
(3) 哈密瓜转化植株的再生
两日后将共培养的子叶块取出,无菌水冲洗4遍后接种于脱菌培养基(MS+BA1.0mg.l-1+Amp400mg.l-1)。两日后转接于MS+BA1.0mg.l-1+Amp400mg.l-1+Km50mg.l-1的分化培养基上,20日后根据分化状况逐渐降低细胞分裂素的浓度,进行继代培养(MS+BA0.8-0.2mg.l-1+Amp400mg.l-1+Km75mg.l-1+GA30.5mg.l-1)。待分化出的芽长至2-3 cm时,接种于1/2MS+IBA1.0mg.l-1+ GA30.2mg.l-1 +Amp200mg.l-1+Km50mg.l-1的生根培养基中。(以上培养基均加入AgNO3 6mg.l-1,蔗糖及琼脂用量参照共培养培养基,pH5.8。)
1.4 转化植株的检测
1.4.1 转化植株的km抗性检测〔4〕 将转化植株的顶芽及未转化植株(对照株)的顶芽接种于含km(50mg.L-1)的生根培养基中,观察其生长及生根情况。
1.4.2 转化植株目的基因的PCR检测 转化植株DNA的提取参照巩振辉的微量DNA的提取方法〔5〕,略作改动。 农杆菌Ti质粒DNA的提取参照分子克隆实验指南(第二版)〔6〕:
(1) 植物DNA及质粒DNA的检测
分别取植物DNA及质粒DNA5µl,加入1µl上样缓冲液在0.8%的琼脂糖凝胶中电泳40min,用溴化乙锭染色20min,紫外灯下观察。
(2) PCR目的基因的扩增
根据目的基因序列合成引物。
引物1:5’GCG TTC AGC CGT CTC GGA AG 3’
引物2:5’CCA TGA ACC TGC ACC GAT TC 3’
PCR反应在0.5ml Eppendorf 管中进行,反应总体积为25µl。95℃预变性5min后,按三温体系共35个循环:95℃变性1min,54℃退火1min,72℃延伸2min,反应结束后,72℃再延伸5min。
(3) PCR扩增产物的检测
分别取扩增产物10µl,加入溴酚兰于1%的琼脂糖凝胶中进行电泳,用λDNA/EcoRⅠ-HindⅢ标准分子量作为Marker。
1.5 叶片乙烯生成量测定
用打孔器取功能叶片100片,置密闭小瓶中,每隔0.5h测定一次乙烯释放量,连续测定3h,每个样品设置三次重复。从小瓶中抽取500µl气体,用岛津GC-9A气相色谱仪分析。
1.6 叶片过氧化物同工酶电泳
方法参照生物化学实验方法与技术〔7〕,略有改动。
2 结果与分析
2.1 农杆菌介导的遗传转化
2.1.1 哈密瓜外植体的侵染 哈密瓜子叶的分化具有极性现象〔8〕,选择靠近胚轴的子叶块作为外植体进行侵染。由于品种有差别,经实验确定伽师瓜子叶的侵染时间为5min,皇后的为8min。实验表明,菌液中加入AS,提高了农杆菌侵染外植体伤口的能力。
2.1.2 哈密瓜转化植株的再生 农杆菌在黑暗条件下繁殖迅速,易于通过伤口进入外植体。外植体于共培养培养基中暗培2d可提高转化率。
表1 哈密瓜未侵染子叶与侵染子叶的再生比较
接种量
愈伤组织分化率(%)
芽分化率
(%)
绿苗率(%)
生根时间(d)
生根量
(条)
未侵染子叶
100
87
77
75
7.6
7.4
侵染子叶
100
92
26
3
13.2
16.5
由上表可以看出,经侵染的外植体(子叶块)在4~7d后可以见到明显的愈伤组织生成,其分化率略高于对照(未侵染子叶),但产生愈伤组织及进行分化的时间明显延后,其分化成芽的能力显著降低,获得的绿苗数也相差较多。培养基中加入适量AgNO3,未侵染子叶的芽分化率由72%提高到77%〔9〕。在植株生长过程中可观察到,对照苗的节间长于转化苗;其发根速度快,平均为7.6d可见到第一条新根,主根数量较转化苗少,根系粗壮发达,有明显的主根及须根(见图版1),而转化苗生根较慢,平均需13.2d,发根数量比对照苗多,但其根系较细,无明显的主根(见图版2)。
2.2 哈密瓜转化植株的检测
2.2.1 转化植株的km抗性检测结果 将转化植株的顶芽及对照株的顶芽接种于含km(50mg.L-1)的生根培养基中,8-10d后即可发现,对照株叶片逐渐黄化、白化,顶部开始萎蔫,不再有任何生长趋势,15d后整株死亡;转化植株不断生长,叶片保持绿色,8~15d后有白色的根出现,25~30d后可长成一株完整植株(见图版3)。
2.2.2 转化植株目的基因的PCR检测结果
(1)植物DNA及质粒DNA的检测结果
将植物DNA及质粒DNA进行电泳后观察,在紫外灯下仅出现一条丫啶橙色的条带,可以利用这些样品作为PCR体系中的模板进行下一步实验。
(2)目的基因的PCR检测结果
经过对PCR扩增产物进行电泳,其结果见图1。(删)
由图1可看出,对照植株(阴性对照)未出现扩增条带,经过km 筛选的6株转化植株中的4株4、5、6和9(T1,T2,T3和T6)及质粒(阳性对照)在分子量为1 kb的位置上出现了目的基因的特异性扩增,说明ACC脱氨酶基因已通过农杆菌介导进入了哈密瓜组织,并整合到其染色体DNA上;而经过km 筛选的植株7和8(T4、T5)并未在相应位置出现扩增 条带,因此判断为假阳性植株。
2.3 叶片乙烯生成量的测定
植物在受到伤害时会产生大量的伤乙烯〔10〕,测定对照植株及转化植株叶片受伤后乙烯的释放量,结果见图2:
由图可知,皇后对照植株叶片在受到伤害后,在0.5h 内就达到14.21nl.l-1,1.5h时,乙烯释放量达到最大,为20.43nl.l-1,然后急剧下降,到3h时,乙烯释放量降低到9.82nl.l-1。而转化植株T3叶片在受到伤害时,乙烯的释放量较少,0.5h为3.98nl.l-1, 1.5h时,为5.28 nl.l-1,没有乙烯生成高峰期,表明转基因植株叶片中由于有ACC脱氨酶基因的存在,乙烯的生成受到抑制。在乙烯生成高峰期,转基因植株叶片的乙烯生成仅为对照的20.9%。
而转化植株T1在测定过程中,也出现了乙烯的产生高峰期,说明ACC脱氨酶基因在植株中没有进行有效表达。
2.4 过氧化酶同工酶电泳
过氧化酶同工酶电泳结果显示,转化植株3、4、6(T2、T3、T6)叶片的过氧化物同工酶比对照植株叶片1、7的过氧化物同工酶多出现一条颜色浅而窄的酶带E,其泳动迁移率(Rf)值为0.53。可能是因为ACC脱氨酶基因的导入使得转化植株中编码这类酶的某些基因得以表达。而转化植株2(T1),抗Km植株5(T4)的过氧化物同工酶条带与对照植株相同。
3 讨论与结论
本实验选用2个优质新疆哈密瓜品种:伽师瓜和皇后,通过农杆菌介导法进行遗传转化获得抗km的植株。PCR检测结果初步证明1kb的ACC脱氨酶基因已导入4株皇后植株中。
对转化植株和非转化植株的叶片测定伤乙烯可知,转化植株叶片在受到伤害时,伤乙
烯的合成受到一定程度的抑制。
同工酶作为基因的直接产物,用其作为遗传标记,可以提供重要的遗传信息〔10〕。对于组织培养所获得的再生植株和转基因植株,由于芽及根的分化并不完全一致,移栽后植株受到内在因素和外界因素的影响,不同植株的发育时期不能保证完全是同期的。对于本实验中的结果只是作为一种实验方法的结果予以借鉴。