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【求助】caspase-3检测问题

丁香园论坛

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最近在做凋亡,在用凯基的caspase-3分光光度法试剂盒检测

细胞经过与药物孵育24小时后检测

用酶标仪检测,OD值在0.1-0.3之间,有一定浓度依赖,高浓度下caspase-3的活化程度有差不多4

问题在于,我用BCA蛋白定量得到的蛋白浓度时30多ug/ul,我加了有250ug,如果按照说明书的话,这个OD值应该在1左右,而我的最高才0.3.另外我的control孔(没加药)与我最低浓度的值差不多。

问题 1. 我的control孔的相对活化程度也有2,这是不是说明细胞状态不好呢。我的细胞密度是undefined10^6,6孔板2mL
2. 我这个结果可信不?还是可能因为我们的化合物还有其他非基于caspase-3的凋亡途径呢?

求解答。谢谢、
您好,请问您做出来了吗?我也是用凯基的,测出来的值很小很小。我用六孔板养的细胞,测出来的蛋白量远超过了200ug,所以当时取了200ug测的,但是值好小呀。问凯基的技术支持,人家说六孔板细胞量不够,不知道您六孔板细胞量够吗?还有您后来做出来的结果咋样?有啥改进的地方没?好愁呀,希望得到您的帮助。急着毕业呀!
我用的是悬浮细胞,接板密度大于10e6个,用的量完全够。如果这样子的话可能是你的化合物并没有激活casp-3吧
你好,你以前应该用过caspase-3比色法检测试剂盒吧,虽然是很久以前的事了,用的是哪家公司的?效果怎么样?我用的是碧云天的,完全没效果,但是流式测试时有凋亡的,请大侠指教。谢谢!

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